Трилитиевые соли (1`r,5`r)-3`-аза-1`- (2-амино-1,6-дигидро - 6-оксопуринил-9) -3`-дезокси-3`- (азидонафталин-1- сульфамидо) гексопиранозил-6`-трифосфатов в качестве специфических фотоактивируемых необратимых ингибиторов рнк- полимеразы
Использование: в качестве специфических фотоактивируемых необратимых ингибиторов РНК - полимеразы. Сущность: продукт - трилитиевые соли (1
R,5
R)-3
-аза- 1
-(2-амино-1,6-дигидро-оксопуринил-9)- 3
-дезокси 3
(азидонафталин-1-сульфамидо)гексопиранозил- 6
-трифосфатов. Выход 58 - 63% БФ C20H26Li3N10O16P3S
2H2O Реагент 1: 4- или 5-азидонафталин-1-сульфонилгидразин. Реагент 2: натриевая соль оксо-гуанозин- 5
-трифосфат в присутствии литий-ацетатного буфера. Условия реакции в среде диоксана при pH 4,5 - 5. 2 табл.
Изобретение относится к новым химическим соединениям трилитиевым солям (1 R,5 R)-3 -аза-1 -(2-амино-1,6-дигидро-6- оксо- пуринил-9)-аза-3 дезокси-3 -(азидонафталин-1-суфамидо)гексопиранозил-6 -трифос- фатов общей формулы H
O
где R1 N3 и R2 Н (I) или R1 Н и R2 N3 (II), как специфическим фотоактивируемым необратимым ингибиторам РНК-полимеразы.
0,5 мл и обрабатывают 5 мл охлажденной смеси безводный этанол безводный диэтиловый эфир (3:1, об.). Выпавший осадок отделяют центрифугированием, промывают безводным диоксаном, затем безводным диэтиловым эфиром и высушивают в вакууме в присутствии фосфорного ангидрида. По- лучают 50 мг целевого продукта (выход 63,5%). Физико-химические свойства полученного соединения представлены в табл.1. П р и м е р 2. Трилитиевая соль (1 R,5 R)-3 -аза-1 -(2-амино-1,6-дигидро-6-оксо-пури- нил-9)-3 -дезокси-3 -(5-азидонафталин-1-су- льфамидо)гексопиранозил-6 -трифосфата (II). В условиях, описанных в примере 1, используя 34 мг (0,13 ммоль) 5-азидонафталин-1-сульфонилгидразина, получают 46 мг целевого продукта (выход 58% ). Физико-химические свойства полученного соединения представлены в табл.1. Изучение ингибирования РНК-полимеразы описываемыми соединениями проводили следующим образом. ДНК-зависимую РНК-полимеразу фага Т7 выделяли из штамма-продуцента Е.coli. Активность фермента определяли по образованию /32Р/-РНК из /32Р/-нуклеозидтрифосфатов. Инкубационная смесь для определения активности содержит 50 мМ Трис-НСl, рН 7,8; 10 мМ МgСl2; 5 мМ LiCl; 10 мМ
-меркаптоэтанол, раствор плазмиды рGЕМ-2 ("Рromega Biochem.", США) 20-40 мкг/мл; аденозин-5 -трифосфат (АТФ), уридин-5 -трифосфат (УТФ), цитидин-5 -трифосфат (ЦТФ) и гуанозин-5 -трифосфат (ГТФ) по 0,4 мкмоль/мл; /
-32P/-АТФ или /
-32Р/-УТФ (200000 имп./мин на пробу); фермент 0,2-0,5 мкг в пробе. При определении ингибирующего действия в среду инкубации при красном свете вносят изучаемое соединение для получения раствора требуемой концентрации. Общий объем пробы 25 мкл. Реакцию проводят при 37оС в течение 20 мин. Определение количества образовавшейся РНК (кислотонерастворимого материала) проводят известным способом. Значение I50 определяют из графика зависимости активности фермента от концентрации ингибитора. Используемый препарат ДНК-зависимой РНК-полимеразы фага Т7 имеет активность 130000-160000 ед. и характеризуется следующими значениями Км для нуклеозид-5 -трифосфатов: Км ГТФ 0,16 мМ; Км АТФ 0,04 мМ; Км ЦТФ 0,08 мМ; Км УТФ 0,06 мМ. Инициирующим реакцию нуклеозидтрифосфатом является ГТФ. В указанных условиях (при красном свете) значение I50 для соединений I и II составляло 0,35 и 0,18 мМ соответственно. Ингибирование носило обратимый характер. Под действием света (
320
10 нм) происходит необратимое связывание ингибиторов с ферментом в результате генерации высокореакционноспособного нитренового радикала. Свободнорадикальный механизм реакции делает возможным ковалентное взаимодействие ингибиторов практически с любыми аминокислотными остатками в связывающем участке белка. Эффект ингибирования РНК-полимеразы описываемыми соединениями в условиях фотолиза увеличивается с течением времени и не уменьшается после их удаления из среды преинкубации (гель-фильтрация), что указывает на необратимое связывание ингибиторов с ферментом. Препарат фермента, модифицированного соединениями I и II, после гель-фильтрации обладал выраженными флуоресцентными свойствами (
mах возб.=350 и 360 нм,
mах флуор.425 и 450 нм, соотв.), что также свидетельствует о необратимом связывании ингибиторов I и II с РНК-полимеразой. При совместной преинкубации РНК-полимеразы с соединениями I и II и 5 мМ (субстрат РНК-полимеразы) наблюдается защитный эффект от действия ингибиторов, что указывает на их специфическое взаимодействие с активным центром фермента. Ингибирование РНК-полимеразы соединениями I и II (в условиях фотолиза), а также наиболее близким структурным аналогом (1 R, 5 R)-3 -аза-1 -(2-амино-1,6-дигидро-6-оксопуринил-9)-3 -дезокси-3 -(2-гид- роксибензамидо)гексопиранозил-6 -трифо- сфатом (III), охарактеризовано данными, приведенными в табл. 2. Ингибирующее действие соединений I,II и III на РНК-по- лимеразу. При изучении изменения интенсивности флуоресценции ковалентных фермент-ингибиторных комплексов в результате осуществленного щелочного гидролиза (рН 12, 0оС, 48 ч) морфолинового фрагмента остатков ингибиторов I и II было обнаружено увеличение интенсивности флуоресценции
в 1,5 раза. Как вытекает из сравнения указанных данных, описываемые соединения I и II оказывают значительно более выраженное необратимое ингибирующее действие на РНК-полимеразу по сравнению с известным соединением III и расширяют арсенал специфических необратимых ингибиторов фермента, позволяющих проводить его изучение с помощью спектрофлуориметрии. Описываемые соединения I и II могут быть использованы для локализации ГТФ-связывающих центров в белках.Формула изобретения
1. Трилитиевые соли (1' R, 5' R)-3'-аза-1'-(2-амино-1,6-дигидро-6-оксопуринил-6)-3' дезокси-3'- (азидонафталин-1-сульфамидо)- гексопиранозил-6'-трифосфатов общей формулы
где R1 N3; R2 H;
или R1 H;
R2 N3,
в качестве специфических фотоактивируемых необратимых ингибиторов РНК-полимеразы.
РИСУНКИ
Рисунок 1, Рисунок 2





















