Способ определения стресс-реакции
СОЮЗ СОВЕТСКИХ
СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ
РЕСПУБЛИК (19) (11) ГОСУДАРСТВЕННОЕ ПАТЕНТНОЕ
ВЕДОМСТВО СССР (ГОСПАТЕНТ. СССР) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
К АВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ (21) 4489405/14 (22) 03.10.88 (46) 23.12 ;92. Бюл. В 47 (71) Свердловский государственный медицинский институт (72) О.Г.Макеев, И.ВЯсырева и А,В.Коротков (56) Авторское свидетельство СССР
N 1293651, кл. G 01 N 33/58, опублик, 1987. (54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СТРЕСС-РЕАКЦИИ (57) Использование: физиология, медицина.
Целью изобретения является повышение точ((остИ способа. Сущность изобретения: в
Изобретение относится к медицийе и физиолотии, а именно к методам исследования эритроцитарных транспортных систем.
Известны способы оценки стресс-реакции путем определения объема кровотока через -голбвной мозг и константы скорости потребления кислорода тканями мозга, анализа электрокардиограммы.
Наиболее близким к изобретению является способ определения реакции организма на воздействие стрессорных факторов, основанный на определении в крови кислой фосфатазы, катепсина Д и щелочной фосфатазы в периоды относительного функционального покоя и действия стрессора. При повышении активности ферментов в условиях стресса менее чем на 20% устанавливают нормальную реакцию организма, а при увеличении более чем íà 20% — патологическую реакцию, (s1)s G 01 N 33/58, А 61 К 47/00 качестве инкубационой среды эритроцитов с мечеными биологически активными веществами (БАВ) используется околоклеточная среда органов и тканей, в которых происходит эритроцитарный обмен БАВ. При этом околоклеточная среда, взаимодействуя с эритроцитами, вызывает отсоединение
БАВ, активно используемых тканями (и недостаток которых имеется в среде), и присоединение к эритроцита(и БАВ, имеющихся в околоклеточной среде в избытке, что моделирует условия обмена БАВ в тканях. По окончании инкубации эритроциты отмывают от инкубационной среды и радиометрируют. 5 табл.
Недостатком способа является низкая ф точность оценки. Последнее обусловлено широкими пределами колебания концентрации ферментов в зависимости от возраста, режима питания, наличия заболеваний, 4 в том числе хронических, групп крови (Кли- . ОО . ническая оценка лабораторных тестов/Под (д . ред, Н,У.Тица. M. Медицина, 480 с).,фЬ.
Целью изобретения является повыше- ф, ние точности способа. С>
Цель достигается тем, что в способе, включающем исследование биологически активных веществ (EAB) крови, эритроциты помещают в биологические жидкости организма, в которые дополнительно вносят меченые БАВ, и при определении отношения приращения связыванйя с эритроцитами
БАВ менее 0,63 устанавливают начальную стадию стресс-реакции, а при значении более 1,37 устанавливают стадию поврежде ния клеточныхмембран.
1783440
Увеличение точности способа происходит за счет того, что начальная стадия стресс-реакции, сопровождающаяся изменением состава и свойств биологических жидкостей, вызывает снижение взаимодействия эритроциты-меченые БАВ, а развитие . стресс-реакции, сопровождающееся повреждением клеточных мембран (повреждение липидного бислоя); приводит к повышению взаимодействия эритроциты— меченые БАВ (в результате увеличения неспецифического компонента взаимодействия).
В осуществлении способа используются БАВ, принимающие активное участие в процессах адаптации и компенсации повреждения — кортикостероиды и простагландин Ez (ПГЕр).
Способ осуществляется следующим образом.
На 1 этапе определяют характеристики эритроцитов и сыворотки интактных доноров. Эритроциты получают посредством центрифугирования интактных доноров.
Эритроциты получают посредством центрифугирования стабилизированной крови и помещают в 0,4 мл биологической жидкости (сыворотки, околоклеточной жидкости), полученной от интактных доноров, в которую внесены меченые кортикостероиды и ПГЕ в концентрациях 10 -10 моль для ПГЕ и кортикостероиды и 10 "o-10 моль. Основное требование при проведении этого этапа — предварительное тестирование крови людей по системе АВО. Спустя 30 мин инкубации этой смеси при 37 С эритроциты отмывают от несвязанного лиганда на миллипоровых фильтрах. Фильтры высушивают и радиометрируют в простом толуоловом сцинтилляторе, На основайии полученных данных строят график зависимости количества связавшегося вещества (ось ординат) от концентрации внесенного в инкубационную среду (ось абсцисс).
На построенном графике определяют место перегиба, необходимость выявления
"которого обусловлена тем, что этой точке соответствует насыщение специфических к данному радиолиганду участков связывания. Дальнейшее связывание (после насыщения специфических участков) обусловлено неспецифическими процессами (липофильностью и гидрофобностью
БАВ), химическими и физическими свойствами мембраны.
Таким образом, смещение точки перегиба свидетельствует об изменении концентрации данного БАВ в окружающей клетку среде, которое вступает в конкуренцию с меченым аналогом за места специфического связывания. Полученная концентрация и превышающая ее на порядок- в дальнейшем используются для оценки стадии стресс-реакции. Дополнительная концентрация (на
5 порядок большая) необходима для оценки неспецифического связывания, которое в основном зависит от химического состава мембран, и=меняющегося под действием стресса.
10 Эритроциты и сыворотку, исследованные на 1 этапе, сохраняют в течение 2-3 недель при I-4 С и используют по мере необходимости на 2 этапе. Экспериментальным путем определено, что исследованные
15 показатели при хранении в этих условиях в течение 3 недель не изменяются.
Проведением 1 этапа(определение концентрации радиолиганда) достигается существенное повышение точности оценки
20 стресс-реакции благодаря исключению погрешностей; связанных с индивидуальными особенностями доноров и качеством использованных в работе реактивов.
На 2 этапе готовят 2 серии инкубацион25 ных культур:
1 серия — эритроциты здоровых доноров (заготовлены на 1 этапе), биологическая жидкость обследуемых;
2 серия — эритроциты обследуемых, би30 ологическая.жидкость здоровых доноров (заготовлена на 1 этапе).
В каждой серии исследуется связывание с эритроцитами меченых ПГЕ и кортизола (кортикостерона у лабораторных
35 животных, что обусловлено особенностями их эндокринной регуляции) в концентраци- ях, определенных на 1 этапе, которые добавляются в среде перед внесением эритроцитов. Режимы инкубации и последу40 ющей радиометрии аналогичны 1 этапу. На основании пОлученных данных рассчитывают отношение приращений связывания лигандов в 1 и 2 сериях по отношению приращений связывания лигандов, пол45 ученных на 1 этапе(эритроциты и сыворотка интактных доноров). При возрастании концентрации меченого БАВ, в среде инкубации на порядок определяют разницу отношений приращений для двух концент50 раций в 1 и 2 сериях, Выявляют вещество, для которого эта величина окажется наименьшей, и на основании этого производят оценку стадии стресс-реакции. Выполнение подобной процедуры приводит к некоторо55 му загрублению метода, однако подобный подход оправдан, так как позволяет снизить влияние случайных факторов на результат, что ведет к повышению точности способа (Горелик Л.А. и др. Методы распознавания.
M.: Высшая школа, 1989, с. 99-111), 1783440
Способ поясняется следующими примерами.
Пример 1, Возраст обследуемых от
20 до 50 лет. По предлагаемому способу обследовано 120 рабочих. " — 5
Первый этап исследования. Кров здоровых доноров получали со станции перелива ния крови. Полученную кровь тестировали по системе АБО и резус-фактору. Эритроциты из цельной крови получали центрифуги- 10 рованиеми (3,5 тыс. об/мин, 15 мин), дважды отмывали раствороМ Хенкса при тех же ре-"
>кимах центрифугирования, Отмытые эрит- роциты суспендировалй в растворе Хенкса по 25 10 клеток в 50 мкл среды, заливали 15 их в пластмассовйе трубы и для хранейия помещалй в холодильник при 1-4 С.
Сыворотку крови от здоровых донбров фильтровали через миллипоровые фильтры с величиной пор 220 нм и помещали в пла - 20 стмассовые трубы в холодильник при 1-4 С, . На 1 этапе сыворотку крови здоровых доноров в объеме 400 мкл помещали в полистироловые-платы, в которые вносйли меченные по тритию и углеродулиганды(5, 25
6, 8, 11, 12; 14, 15зН-простагландин Е2 фйрмы Амершам, молярная активность — 6,48
ТБк/ммоль) в объеме 50 мкл физраствбра до конечных:Концентраций 500 мкл инкубационной среды"10 11, 2 10 11, 4 10 ", 8 10 ", 30
10 "2,:2 10""o 4 10 "o 8 10 10 моль и
4" С-кортизол (молярная активность 1,8
ТБк/моль, CCCP) в объеме 50 мкл до конечных концентраций 10, 2 10 4 10 ", 8
10", 10, 2 ° 10, 4 10, 8 10, 10 моль 35 по три пробы каждой концентрации, Процедура разведенйя" на примере разведения ПГЕ2.
Удельная радиоактивность ПГЕ2 ito пас- . порту составляет 6,48 ТБк/ммоль, объем- 40 ная радиоактивность флакона по паспорту
-3,7 МБк/мл. Радиоактивность фасовки
1,85 МБк. Следовательно, для вычисления обьема растворителя, в котором поставля45 ется ПГЕ2, необходимо общую активность фасовки разделить на объемную радиоактивность (1,85 МБк;3, 7 МБк/мл=0,5 мл или
500 мкл). Для оп ределеиия количества ве- щества, находящегося в фасовке, общую радиоаКтивность фасовки разделяют на 50 удельную радиоактивность. вещества (1 85"
М Бк:6,48 ТБкlммоль = 0,285 10 ммоль или
0,285 10 моль), Такйм образом; имеется 0,285 10 моль ПГЕ2, растворенного в 500 мкл абсо- 55 лютного этанола (растворитель поставки), Необходимо в инкубационной среде с общим объемом 0,5 мл соз„ать концентрацию ПГЕ2
10 моль (примр), 1 онцентрация 10 М соответствует 10 M в 1 мл или 0,5 10 в
0,5 мл, Для решения атой пропорции 0,5 .10 " М х 500 мкл: 0,285 10 М=8,75 мкл, Следовательно, 0,5 10 М ПГЕ2 содержится в 8,75 10 мкл. Необходимо взять 87 5 мкл и развести в 10 раз. Разь бдение осуществляется поэтапно, На 1 этапе 8,75 мкл исходного раствора "разводят 500,0 мкл физраствора, 50 мкл полученного раствора разводят в 0,450 мл физраствора (разведение в 100 раз). При разведении 50 мкл последнего раствора в 450 мкл среды получают конечную концентрацию (разведение в 10 раз) в инкубационной среде, содержа цгй
cbIBopoTK>t, эритроциты N ПГЕ2.
По той же схеме рассчитывают другие концентрации.
Радиоактивность полученных концентраций рассчитывают по формуле: количество вещества, умноженное на уд. радиоактивность вещества (0,5 10 " x6,48x10
Бк/мол ь=32,4 Бк), Следуетотметить что 10 " моль вещества соответствует 10 (число
Авогардо)х10 = 10 молекул; таким образом, в 0,5 мл инкубационной среды с концентрацией ПГЕ2 10 моль содержится 10 молекул ПГЕ2.
Расчет радиоактивности используют при проведении очистки ПГЕ2 на колонке, заполненной кремниевой кислотой (БИР
РЕД, США), смесью 0,04 обьемных долей метанола и 0,96 обьемных долей хлороформа с последующим упариванием и разведением в абсолютном этаноле. В последнем случае пересчитывают на выход с колонки (65% — х0, 65).
В каждую ячейку платы заливают 25 10 эритроцитов (к уже залитым сыворотке и меченому лиганду) в объеме 50 мкл и помещают в термостат при 37 С.
После.инкубации клетки осаждают на миллипоровые фильтры (450 нм) и отмывают
25-KpBTHblMt t о5ьемами физраствора, содержащего немеченые лиганды (десятикратно превышающие по концентрации использованные). Фильтры высушивают и радиометрируют в простом толуоловом сцинтиллятаре на сцинтилляционном счетчике Бета-2 (эффективность счета по Н— з
57,5%, по С вЂ” 97%) °
Данные представлены в табл.1.
На основании таблицы строили график зависимости количества связавшегося вещества (ось ординат) от концентрации, внесенной в среду инкубации (ось абсцисс) для донора С., 28 лет, Ш rp. крови, резус+.
На построенном графике определяли место перегиба(для ПГЕ2 — 0,9 10 М, для кортизола — 10 М).
1783440
Полученные таким образом результаты являются контрольными для обследуемых, . имеющих группу крови Ill и резус+, На 2 этапе исследования у обследуемых также получали эритроциты крови (3-кратной отмывкой центрифугированием 3.5 тыс. об/мин, 15 мин), стабилизированной гепарином или цитратом венозной крови, и сыворотку(отстаиванием при 4 С в течение 2 ч и последующим центрифугированием 3,5 тыс.об/мин, 15 мин) нестабилизированной венозной крови, Полученную от пациентов кровь тестировали по системе АВ0 и по наличию в крови резус-фактора. При определении И! группы крови и резуса + использовали для проведения реакции эритроциты и сыворотку здорового донора С. Кровь обследуемых с иной группой исследовали с эритроцитами и сывороткой здоровых доноров соответствующей группы крови. . Сыворотку крови рабочего IT,(26 лет, стаж работы 1 год, оператор), имеющего Ш группу крови и резус + в объеме 0.4 мл, заливали в 12 ячеек пластиковых плат (объем ячейки 1,5 мл) и приливали меченый ПГЕ2 в концентрациях, определенных на 1 этапе (0,9 101О-точка перегиба и0,9 109 — в10 раз большая), в 6 ячеек и меченый кортизол (10 9 и 10 моль) в 6 ячеек по 3 на каждую концентрацию, В следующие.12 ячеек заливали сыворотку здорового донора С., в которые аналогичным образом и в тех же концентрациях приливали меченые лиганды (но 3 на каждую концентрацию), Лолистироловые платы разогревали в термостате втечение 5мин(37 С) ив заполненные ячейки вносили эритроциты; в сыворотку крови обследуемого П. —. по 25 10 клеток здорового донора С. в объеме 50 мкл и в сыворотку крови здорового донора С.—
25.10 эритроцитов обследуемого П. (50
6 мкл).
После 30-минутной инкубации при 37 С эритроциты осаждали на фильтры с величиной пор 450 нм, отмывали 25-кратным объемом физиологического раствора, содержащим в избытке немеченые лиганды..
Фильтры подсушивали и помещали в специальные контейнеры, в которых доставляли в лабораторию СГМИ, где радиометрировэли .на счетчике БЕТА-2. На основании полученных данных составлена табл.2.
Пример расчета поданным рабочего П.;
Хопцт 701,1 — 662,2 0 4
Хконтроль 740 — 643,0 где 0,4 —. отношение приращений связывания ПГЕ2 с эритроцитами донора С. при инкубации с сывороткой донора D. По отношению к приращению связывания ПГЕ2 с . эритроцитами донора С, при их инкубации с сывороткой донора С. (Хоп/Хконтр).
Хопыт 736 - 585,51
Хконтр 737,1 — 592,4
- 1,04, (см. табл.1)
10 где 1,04 — отношенйе приращений связывэния кортизола с эритроцитами обследуемого Il. при инкубации в сыворотке донора С. по отношению к приращению связывания кортизола с,эритроцитами донора С. при их
15 инкубации с сывороткой донора С, Как следует из полученных данных, в маибрльшей степени изменяется связыва, ние МГЕ2; поэтому, с целью повышения достоверности, "анализ следует проводить по
20 данным изменения связывания кортизолэ.
Достоверные отличия связывания кортизола получены при инкубации эритроцитов донора С. с сывороткой рабочего П (отношение приращений менее 0,63); следо25 вательно, сыворотка обследуемого П. оказывает ингибирующее действие ма связывание меченого кортизола, что обусловлено избытком немеченого кортизолэ в сыворотке П. Возрастание концентрации
30 кортизола в сыворотке характерно для начальной стадии стресс-реакции.
Таким образом, обследуемый П. нахо дится в начальной стадии стресс-реакции.
На основании проведенных исследовэ35 мий составлена диагностическая таблица, использование которой значительно упрощает диагностическую процедуру (Ta6n.3).
Пример 2. 1 пациент К., 23 года, 1 производство. слесарь КИП, стаж работы 3
40 года.
2 пациент, Il„38 лет, оператор, стаж работы 3 года. . 3 пациент C„24 года, оператор, стаж работы 4 года.
45 Результаты представлены в табл.4, Как следует из данных, полученных при
: исследовании по заявляемому способу 1 па- . циента (К), наименьшей разницей отношений приращений связывания обладает
50 меченый ПГЕ2; следовательно, для повышения точности диагностики стадии стресс-реакции целесообразно использоватьдэнмые, полученные при инкубации эритроцитов с
ПГЕ2. Во всех случаях отношение прираще55 ний связывания находится в пределах 0,631,37. Следовательно, стресс-реакция отсутствует.
При обследовании пациента К. по прототипу обнаружено значительное (на 48 ) 1783440
Пример 3. В эксперименте использо-, вали мышей линии СВА в количестве 40
5 (самцы, возраст 5-6 месяцев, масса 18-22 г).
В ходе эксперимента животных разделяли на 2 группы, у одной из которых вызывали развитие стресс-реакции путем обездвиживания в плексиглазовых трубах в
0 течение 8 ч, другую содержали в обычных условиях (по 20 животных в каждой группе).
S ходе эксперимента использовали метод слепого контроля, состоящий в том, что до конца исследования принадлежность живо5 тного к той или иной группе была неизвестна.
В связи с выполнением эксперимента на животных в методику исследований были внесены следующие изменения:
1) получение крови и сыворотки производили декапитацией животных;
2) групповая совместимость крови не оценивалась, так как была обеспечена генетической идентичностью линии животных;
3) в исследовании вместо "4Ñ-кортизола был использован Н-кортикостерон (1, 2„ 6, з
T Н4-кортикостерон, молярная активность з
2720 ТБк/моль), что связано с особенностью их нефроэндокринной регуляции.
4. Для оценки концентрации ферментов были использованы методические приемы, позволяющие исследовать активность ферментов в микроколичествах крови.
5. Количество добавляемой в платы сыворотки составляло 100 мкл, а меченые лиганды вносились в объеме 10 мкл.
6. Ввиду малого количества сыворотки, получаемой от.животных, на 2 этапе исследования проводили в 2 повторностях, по каждой концентрации меченого БАВ.
% увеличение кислой и щелочной фосфатаз, что, согласно прототипу, расценивается как наличие стресс-реакции. Противоречие диагностики нашло объяснение в том, что у обследуемого К. при клиническом и лабо- 5 раторном исследовании выявлен хронический, вялотекущий пиелонефрит, сопровождающийся нарастанием активности ферментов крови;
При обследовании пациента П, наи- 10 меньшей разницей отношений приращений обладает кортиэол, поэтому анализировали связывание эритроцитами кортиэола. Изменение связывания кортиэола с эритроцитами донора С. при их инкубации.с 15 сывороткой пациента П меньше порогового значения (0.63), в то же время изменение связывания кортиэола при инкубации эритроцитов пациента П. с сывороткой здорового донора С. не превышает пороговое 20 значение (1,37).
Следовательно, пациент П. находится в стадии тревоги. Анализ активности ферментов по прототипу показал повышение активности ферментов на 16,3, что долж- 2 но рассматриваться как отсутствие стрессреакции. Однако при клиническом обследовании данного пациента обнаружена анемия неясной этилогии (эритроциты—
3,6 Тлитр, гемоглобин — 92 Глитр), провале- 3 нием которой является снижение активности исследуемых ферментов.
Анализ данных, полученных при исследовании крови пациента С., продемонстрировал, что с.целью большей достоверности 3 следует иСпольэовать данные по связыванию ПУЕ2; Оценка этих параметров показывает, что отношение приращений связывания ПГЕ2 с эритроцитами обследуемого С. при инкубации последних в интак- 40 тной сыворотке превышает порог 1,37, что свидетельствует о наличии повреждения клеточных мембран. Важно отметить, что у данного пациента при клиническом исследовании не выявлено соматической патоло- 45 гии, активность ферментов свидетельствует о наличии стресс-реакции (возрастание. ак-: тивности на 61,2 ), Последнее совпадает. с данными, полученными по данному способу. Подтверждением адекватности диагно- 50 стики является то, что исследование проведено сразу после ликвидации аварийной ситуации, связанной с выбросом сернистого газа, и работы в средствах индивидуальной защиты (близкие показате- 55 ли в тот день были получены и у других пациентов).
Следует отметить, что среди обследовэнныхлиц клинически выявлено в 52 случаев обострение хронических заболеваний или вновь возникших заболеваний, в патогенезе которых важное место занимает стресс-реакция (язвеннэя болезнь желудка и 12-перстной кишки, гипертоническая болезнь, астено-вегетативный синдром и др.).
В эту группу вошло 32 человека, оцененных кэк находящихся в стадиях стресс-реакции, и 31 человек — в стадии покоя по методу, изложенному в прототипе. В то же время в данную группу (63 человека) вошло 60 чело-. век, у которых обнаружена та или иная стадия стресс-реакции, и 3 человека, состояние которых расценивалось, как состояние покоя по заявляемому способу. Таким образом, ошибочный диагноз по прототипу был вынесен в 31 случае. или в 49,2 По предлагаемому способу ошибочное заключение было сделано в 3 случаях, или в 4,7 .
Следовательно, повышение точности заявляемого способа по сравнению с прототипом составляет 44,5 .
1783440. Данные для поСтроения кривой зави чества веществ, внесенных
28 лет, III гр.крови, рез средних значениях по 3 пр
»й »»»»»»»«»» »<»<<"»Й<<й »»» »»й»»й»й».. ПРо<стагланди»н Ег . Кортизол
«<
° <ъ «<а»йм»» «« »» <»<»»»
Концентрация в среде„пмоль
{моль) ««»«««««»»
Количество
ЛГИ, свЯ" ванного с
25 !0 эритроцитов, смоль
Концентрация в среде пмоль, (моль) Количество кортизола, связанно» го с 25 10 *"" зритроцЫтов„" фмол ь:„.., - -.:,=: - ;:.:. ;,:::, -,.>:< ж:., Радиоактивность "свя" занной с
25<10 зрит-:
6 роцитов < 6.<<< < кок
Радиоактив" ность свя ванной с
25 10 зрит"
6 роцитов метки,. кБк
10 (10 t!) го
1оо (1o >и)
1000 (1о м) 0,15
0,81
2,15
3,34
4,17
4,36
4,53
4,69
4,79!
00 (1О И)
4оо :
8о0
1000 (1О !!)
4аоо
1оооа (1î !!) 1»б»,6",, 97,9 "
251,4
414,6
592,
646,8
611,1 "
737,1
23<3
124,7
331,1
643, 5
672,1
699,8
723,9
740,3
0,029 о,176- 0,452 а,75 .
1,07
1,16
1,09
1 29
1,32
l>k " < < < !<- " < 1 " <»< <»
< < <»
;:- Л..
< <
<,<- ъ <<<» и <.л<м>л<ъ « ll»,"«!
< ь<«
На 1 этапе были определены рабочие концентрации меченых БАВ (ПГЕ2 и кортикостерона), которые для мышей линии CBA " составили 1,9 10 "0M, 1,9 10 9 M и 0,8 10
M соответственно, - - - - 5
Данные представлены в табл.5.
Выбрав БАВ с наименьшей разницей отношений приращений, Которйм в том и другом случае является кортико»СЖфбн,« и< сравнив отношенйя приращений кбртико- 10 стерона в диагностической таблице, можно придти к заключению; что животйое N. 17 находится в начальной стадии стрес&реак- ции — в стадии треноги, а животное М 28 - в- стадии покоя. Между тем актИ»вно»с»ть» фер- 16
МЕНТОВ, ОПрЕдЕЛЕНййХ В СООтВЕтст» Влйй С»Пратотипом, по" отйо шению к""ко! !тролю составило 16 и 14% соответств<е<й»!ло," что rio -" " зволяет квалифициронать"Йх с<осТоянйе как состояние покоя. : " - . 20
Расшифровка протоколов пок»а<злаЛа, члтол животное М 17 отнОсится к группЕ сй1киванием стресс-реак- цией, животное М 28 — как интактное, Таким обр»азом,< r1ри диагйос<тйке состо- 25 яния животного К. 17 по методу, изло>кенному в прототипе, допущейа ошибка,"""Анализ данных всего зкс»пер»йме1-!та показал, что ошибочное решение при илсполь-" эл эовании способа, взятого за прототип, принято в 18% случаев, а при использовании предл<агаем»ого способа — в 5% случаен; следбвательйо, й>овыш»ение точности оценки. стадйи с<тр<6с»с< -ре»акции по предлагаемому. способу составляет. 13%, чтр, однако, существенно йй>Ке, чем при обследовании людей.
Г!одобн»ы»й диссонанс .объясняется тем, . что в< отлич»ие"от обследованных людей в .. эксперименте использовали генетически йдейтичн<ьВ, "зайедомо здоровых, содержащихся в оди!лаковых условиях лабораторных животных, что в реальной ситуациийри, обследон>а<йли»й людей практиче<ски исключено, Формула изобретения
Способ определения стресс-реакций,; вклачающий регистра»ци!о уровня биологи-, чески а<кт<йвных веществ (БАВ) в,крови об-. следуемоглб,"о т л и ч а и щ и и с.я тем, что, с целью riîâûøåíèë точности способа, эрит- роциты доноров и обследуемого помещают в биологические жидкости обследуемого, в-которые предварительно вносят меченые
БАВ; регистриру!от уровень приращения . связывания БАВ с эритроцитами обследуе-:. мого, и при его значении менее 0,63 устанав-: .. лива!от !!алйч<йе стресс-реакции....
Таблица1 сй!лости< связы<в»атыйя< ПГЕ2 и кортизола от коли" в среду инкубации (здоровыГл до!лор О., ус +). Радиоактивность представлен<а< з " " = " - " обам
1783440
Табли ча 2
Данные, полученные при обследовании рабочего П. по заявляемому способу
-ь
Связывание С-кортизола
Связывание зН-ПГЕ
Показатели и характеристики
Эритроц. донора С
+сыворотка обслед.П.
Эритроц. обслед.П
+сыаорот ка донора С
Показатели и херактеристики
Эритроц.
П.+сывоЭтироц. донора
С.+сыворотка обслед.П. ротка донора С. ф»
0,9 ° 10
ПГЕЕ
Фиоль (v) 10 П кор.ф тизол в фноль
620,48 фиоль
585,51
662,2
Фмоль
653 ° 05
Фмоль (Ч) (.0,9 ° 10 10 11 кор» 707 ° 3 736,0
ПГЕХ в . 701,1 784,4 тизол в фноль фиоль
Фиоль фмоль (Ч) (Ч) приращение 38,9 приращение 86,82 150,49 (Т -Т)-Хзянг (Т -Y)-Х
I прираз1еиме 97 ° 3 приращение 144,7 при тех же при тех же ! концентр. концентр. в контр. в контр.
Хкек17 Хтеиев
Г отнощение 0,40 1,35 отноиение 0,60 приращем. лриращан.
Хзе/Х кем Ха8/Хкон равмица 0,95 (1,33-0,4) разница 0,44 (1,04-0,6) приращем. приращен.
° о2и3 во 5 и 6
«оленках колонках теблицм таблицы
» ь й»»
1l р и и е ч а н и е: расчет отноаения приращений при возрастании концентрации метки в среде производили ло формуле
Х Крег/аа ТтЕз)а.-Т каир где Х приращение;
Т - связывание при концентрации метки в среде ! инкубации, соотватствуозай точка перегиба у интактного донора;
Т - связывание метки лри концентрации в среде инкубации, в 10 раз больией
131 36
144,7
97,3
1,04
Таблица 3
Отношение приращений исследуемых показателей, полученных на этапе
П р и м е ч а н и е: в том случае, когда отношение приращений связывания БАВ с эритроцитами здоровых доноров, инкубируемых в сыворотке обследуемого лица, менее 0.63, а отношение приращений связывания БАВ с эритроцитами обследуемого, инкубируемых в сыворотке здоровых доноров, более 1,37, состояние обследуемого следует оценивать как переход от стадии тревоги к стадии повреждения клеточных мембран, Пороги приращений 0,63 и 1,37 получены на основании статистического анализа по связыванию использован-, ных меченых лигандов у людей и лабораторных животных, заведомо находящихся в состоянии стресса или состоялу(я покоя, и соответствуют размахам колебаний средней для нормы величины ++ 38 (р(0,05), 1783440
Таблица 4
Пациент №
Эритроциты обследуемых в сыворотке до но ра С.
ПГЕг ко тизол
ПГЕ2
0,97 кортизол0,68 кортизол
1,31
Разница отношений приращений для ПГЕ 0,14 (1,11- 0,97)
Разни а отношений и ля ко тизола 0,63 1 31 - 0 68
0,53
0,61
1,36 1 25
Разница отношений для ПГЕ 0,83 (1,36- 0,53)
Разни а отношений и и а ений ля ко тизола 0,64 1,25 - 0,61
Таблица 5
Оценка стадии стресс-реакции по заявляемому способу и прототипу животных ¹ 17 и ¹
Отношенйе п и а ений связывания БАВ
Животное №
Эритроциты исследуемых, сыворотка интактных жив,х
ПГЕ2 кортикосте он
ПГЕ2 кортикосте он
1,36 t,19
1,36
1,20
0,52
0,51
0,47
0,43
17
Корректор M.Êåðåöìàí
Редактор Г,Бельская
Заказ 45 12 Тираж . Подпис ое
ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ СССР
113035, Москва, Ж-35, Раушская наб„4/5
Производственно-издательский комбинат "Патент", г. Ужгород, ул,Гагарина, 101
Данные обследования 3 рабочих газоконденсатного завода, име ощих Ш группу крови и резус+, Представлены данные отношения приращений связывания БАВ к приращениям связывания, полученным при выполнении 1 этапа (эритроциты и сйворотка донора С).
Эритроциты здорового донора С. в сыворотке обслеемых
0,99 0,72 1,59 1,60
Разница отношений приращений для ПГЕ 0,6 (1,59-0,99) Разница отношений и и а ений ля ко тизола-0,88 1,6-0,71
Эритроциты от интактных жив-х, сыворотка исследу-. емых
;!
Составитель О.Макеев
Техред M.Ìoðãåí ал
Активность ферментов в крови жив-х, 7; к контр .







