Способ определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах крови
Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для целей диагностики. Для определения активности глутатионпероксидазы используют среду инкубации, содержащую: трис/гидроксиметил/аминометан/Трис/-HCI буфер 100 ммоль, рН 8,5 этилендиаминтетраацетат натрия (ЭДТА) 4,0 ммоль азид натрия 10,0 ммоль глутатион 4,0 ммоль гидроперекись третичного бутила. При этом колориметрически измеряют скорость окисления глутатиона с помощью 5,5-дитиобис(2-нитробензойной) кислоты при 412 нм. Способ позволяет определять активность глутатионпероксидазы цельной крови, эритроцитов и тромбоцитов. 1 табл., 3 ил.
СОЮЗ СОВЕТСКИХ
СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ
РЕСПУБЛИК (19) (11) (5ц 4 6 01 М 33/68
ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Н А STOP CHOMY СВИДЕТЕЛЬСТВУ
ГОСУДАРСТВЕННЫЙ КОМИТЕТ
ПО ИЗОБРЕТЕНИЯМ И ОТНРЫТИЯМ
ПРИ ГННТ СССР (21) 4011600/28-14 (22) 13.01. 86 (46) 07.04.89. Бюл. У 13 (71) Минский государственный медицинский институт (72) В.М,Моин (53) б!2.015 (088.8) (54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ ГЛУТАТИОНПЕРОКСИДАЭЫ В ЭРИТРОЦИТАХ . КРОВИ (57) Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для целей диагностики. Для определе-. ния активности глутатионпероксидазы
Изобретение относится к биологической химии и медицине и может использоваться для определения активности ферментов крови.
Цель изобретения — разработка способа определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах крови.
Способ осуществляется следующим образом..
Определение активности глутатионпероксидазы в эритроцитах.
За меру активности глутатионпероксидазы принимают скорость окисления глутатиона в присутствии гидроперекиси третичного бутила. Концентрацию глутатиона до и после инкуба,,ции в предлагаемой среде с помощью
5,5-дитиобис(2-нитробензойной) кис лоты (ДТНБК) определяют колориметри,чески. Количество образующегося продукта — тионитрофенильного аниона используют среду инкубации, содержащую: трис(гидроксиметил) аминометан (трис)-HCl буфер 00 ммоль, рН 8,5; этилендиаминтетраацетат натрия (ЭДТА) 4,0 ммоль; азид натрия
10,0 ммоль; глутатион 4,0 мысль;гидроперекись третичного бутила, При этом колориметрически измеряют скорость окисления глутатиона с помощью
5, 5-дитиобис(2-нитробензойной ) кислоты при 412 нм, Способ позволяет определять актив но сть глута тионп ероксидазы цельной крови, эритроцитов и тромбоцитов. 1 табл,, 3 ил. (ТНФА) — прямо пропорционально количеству сульфогидрильных групп глутатиона, прореагировавших с ДТНБК.
Реактивы: трис-HCl буфер 100 ммоль, рН 8,5, содержащий 4,8 ммоль ЭДТА, 12 ммоль азида натрия и 4,8 ммоль фЬ глутатиона (о); гидроперекись третичного бутила 20 ммоль/л (8 ) три- ы хлоруксусная кислота (ТХУ) 200 г/л (Ь); ДТНБК на метаноле !О ммоль/л (2); трис-НС1 буфер 100 ммоль/л, рН 8,0 ($). !.В качестве антикоагулянта используют ЭДТА (! мг на 1 мл крови).
Эритроциты промывают холодным изотоническим раствором хлорида натрия (9 г/л) с рН 7,4, центрифугируют
30 мин при 4000 об/мин и 4 С, гемолизируют равным объемом дистиллированной воды.и повторным замораживанием и оттаиванием, Гемолизат разво147) 134 дят водой до концентрации по гемоглобину ) 0 г/л, Ход исследования: 100 мкл гемолизата преинкубируют с 830 мкл реактио ва а 10 мин при 37 С, добавляют
70 мкл реактива E и инкубируют точно 5 мин. Реакцию останавливают,цобавлением 200 мкл реактива 5,осажденные белки удаляют центрифугированием. 100 мкл надосадочной жидкости вносят в 9,9 мл реактива ) и добавляют 100 мкл реактива и . Фотометрируют при 412 нм, толщина оптического слоя кюветы 10 мм, Контрольная проба отличается тем, что гемолизат вносят в инкубационную среду непосредственно перед осаждением белков реактивом
С учетом разведения гемолизата и коэффициента молярной экстинкции
ТНФА при 412 нм — 11400 рассчитывают активность глутатионпероксидазы в микромолях израсходованного в реакции субстрата (глутатиона ) по форму= мкмоль/мин/1 г гемоглобина, где
ОП вЂ” оптическая плотность, На фиг,1 показана зависимость активности глутатионпероксидазы (ГП) эритроцитов от концентрации гидроперекиси третичного бутила в среде.
Из представленных данных следует, что насыщение фермента ГП эритроцитов этим субстратом достигается при концентрации его в среде 1,4 ммоль, На фиг.2 показана скорость окисления глутатиона в предлагаемой среде в присутствии глутатионпероксидазы донорской крови (эритроцитов),Из представленных данных следует, что линейная зависимость между скоростью окисления глутатиона (по разнице оптических плотностей (ОП) контрольной и опытной проб) и временем инкубапии в предлагаемой среде сохраняется в пределах не менее б мин.
На фиг. 3 показана зависимость между активностью ГП эритроцитов и количеством фермента в пробе (относительно количества гемоглобина гемолизата), измеренная в предлагаемой среде. Из представленных данных следует, что эта линейная зависи.мость сохраняется в широком диапазоне активности ГП, по меньшей мере до 1000 мкмоль/мин/1г гемоглобина.
)О
Предлаrаемый способ специфичен.
В таблице суммированы результаты проверки специфичности способа определения активности ГП эритроцитов в присутствии ингибитора ГП (монойод-. ацетат), который полностью подавляет ферментативную активность (на 98,8+
+ 0,8 %); обработка гемолизата трансформируюшим раствором практически не влияет на результаты анализа: подавление потенциальной псевдопероксидазной активности гемоглобина трансформацией последнего в цианметгемоглобин статистически недостовер25 но (0347+ ) ьо)%)
Предлагаемыи способ может быть использован при определении активности ГП цельной крови и эритроцитов.
ЗО
Формула изобретения
Способ определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах крови, включающий помещение их в среду инкубации, содержащую 100 ммоль трис -НС1 рН 8,5, 4 ммоль этилендиаМинтетраацетата натрия, 10,0 ммоль рН 8,5, 4 ммоль этилендиаминтетрааце40 тата натрия, 10,0 ммоль азида натрия, 4 ммоль глутатиона, добавление к смеси 1,4 ммоль гидроперекиси третичного бутила, обработку пробы трихлоруксусной кислотой, удаление белково45 го осадка, добавление к надосадочной жидкости 5,5-ди-тиобис(2-нитробензойной) кислоты с последующим спектрофотометрическим измерением оптической плотности при 41 2 нм.
1471134
Гемолиэат
Донор обработанный монойодацетатом нативный обработанный трансформирующим раствором
Ингибирование,7
АктивАктивингибирование
Х ность, мкМ/мин/
/мл ность 1 мкМ/мин/
/мл
Б-я
К- о
Б — в
С вЂ” в
К вЂ” й
К вЂ” а
К вЂ” я
ГП маколь|мин!1 г аеиоалобина
7УО
770
07 14 27 28
Гцдродерекцс лрет -бутило, гтоВь
4Й/8 1
ОП
О,.УОО
0 100
° У 4 5 8 7 8 У Ункубацио иихф
Quz.Г
282,8
296,9
204,6
132,4
248,7
204,6
68,?
280,0
298,0
204,0
138,5
240,0
204,0
66,0
0,99
-0,37
0,29
-4,60
3 50
0,29
3,20
2,0
О
О
4,0
99,3
94,0
98,0
100
1471134
ГПмиоль кии11 г аеио лобииа
ЕОО
ФОО
М0
ggzlg 8>70 Z,Á>10 ГЕЕНО © Ц > щи.3
Составитель Д,Попов
Редактор Е.Папп Техред А.Кравчук Корректор М;Пожо
Заказ 1603/47 Тираж 788 Подписное
ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ СССР
1 13035, Москва, Ж-35, Раушская наб., д. 4/5
Производственно-издательский комбинат "Патент", r.Óæãîðîä, ул. Гагарина,101



