Способ прогнозирования клинической эффективности антибактериального средства
Изобретение относится к медицине, в частности к клинической фармакологии, и касается способа прогнозирования клинической эффективности антибактериального средства. Сущностью способа является инкубация взвеси микробных клеток с антибактериальным средством, взятым в двух концентрациях, соответствующих тем, которые создаются в органах-мишенях при введении средней и высшей терапевтических доз, учет результатов проводят визуально по появлению видимого роста в ячейках планшета. Техническим результатом является возможность прогнозирования клинической эффективности назначаемых препаратов и подбор адекватной дозировки лекарственных средств. 4 табл.
Изобретение относится к области медицины, а именно к клинической фармакологии.
В современных условиях лечение инфекционных заболеваний приобретает не только медицинское значение, но и социальное. Недостаточное финансирование здравоохранения, отсутствие необходимых средств на приобретение дорогостоящих медикаментов заставляет врачей подходить к назначению лекарственных препаратов только по строгим показаниям, когда есть полная уверенность, что данный препарат прогностически является высокоэффективным, безопасным и, что немаловажно, дешевым среди возможных аналогов. Сложившаяся ситуация чрезвычайно важна для эффективной терапии инфекционных заболеваний. Антибактериальные средства являются этиотропными препаратами, поэтому от правильного выбора врача зависит эффективность проводимой терапии. Однако существующие методы определения чувствительности микроорганизмов не рассчитаны на решение вопроса о назначении препарата конкретному больному, поскольку трудоемки и весьма продолжительны по времени исполнения. Именно поэтому для приближения лабораторных бактериологических методов к клинике, к конкретному пациенту, необходимы новые подходы для прогнозирования эффективности антибактериальной терапии, которые в короткие сроки могут ответить на вопросы о том, какой препарат должен быть назначен и в какой технологии. Современные стандартизированные методы определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам подразделяются на методы серийных разведений (в агаре и бульоне, метод микроразведений) и диффузионные (диско-диффузионный метод (ДДМ) и метод Е-тестов) [1, 2]. Методы серийных разведений и Е-тесты позволяют получить количественную характеристику чувствительности микроорганизмов - МПК (минимальная подавляющая концентрация) антибиотика в отношении данного возбудителя, а ДДМ является полуколичественным и позволяет подразделить все штаммы на три категории - чувствительные, умеренно-устойчивые и резистентные. Методы разведений являются достаточно сложными, трудоемкими и используются в основном при исследовании новых антибиотиков, при проведении научных проектов, в рамках эпидемиологического надзора за лекарственной устойчивостью микроорганизмов. ДДМ представляет наиболее простой, удобный и широко используемый метод при рутинном микробиологическом исследовании чувствительности к антибиотикам обычных быстрорастущих и некоторых микроорганизмов со сложными питательными потребностями [3]. Этот метод основан на регистрации диаметра зоны подавления роста микроорганизма вокруг бумажного диска с антибиотиком. В определенных пределах величина диаметра зоны подавления роста пропорциональна величине МПК, поэтому ДДМ позволяет косвенно судить о величине МПК. Оценка результатов проводится с использованием критериев интерпретации, разработанных на основе корреляции значений диаметров зон подавления роста и МПК антибиотика. Однако на результаты определения чувствительности ДДМ могут влиять многие факторы, такие как состав, рН, толщина и равномерность слоя питательной среды, плотность микробной взвеси (инокулюм), скорость роста микроорганизма и возраст культуры, условия инкубации (температура, атмосфера), содержание антибиотика в диске и скорость диффузии его в агар и т.д. [4]. Поэтому эта методика требует строгой стандартизации: использование определенного агара, соблюдение правил приготовления инокулюма, условий инокуляции и инкубации чашек, правильного и регулярного проведения процедур по контролю качества как питательных сред, так и стандартных культур. Но даже при такой стандартизации ответ лабораторией будет дан через 72 часа. Кроме того, чрезвычайно важно, что практикующий врач, получающий заключение из бактериологической лаборатории, не может быть полностью уверен в успехе терапии, даже если возбудитель расценен как чувствительный к конкретному антибиотику. Эффективность проводимой противомикробной терапии во многом зависит от фармакокинетических характеристик антибактериального препарата. Эффект антибиотика in vitro и действие препарата в организме могут не совпадать. Причиной тому может быть неучтенная способность антибактериальных препаратов по-разному проникать в различные органы, ткани и биологические жидкости. Используемые в бактериологической практике методы (в том числе и ДДМ) не учитывают фармакокинетических характеристик. Поставлена задача объединить классический микробиологический подход и оценку фармакокинетических характеристик антибактериальных препаратов. Принцип способа основан на методе разведении при тестировании возбудителей инфекционных заболеваний с помощью двух концентраций антибиотика в соответствии с его накоплением в тех или иных органах при применении максимальных и средних терапевтических доз. Этот принцип позволяет прогнозировать клиническую эффективность назначаемых препаратов и подобрать адекватную дозировку лекарственных средств. Способ осуществляется следующим образом. Тестирование микроорганизмов проводится в полистироловом планшете по ТУ-64-2-375-86 с горизонтальными и вертикальными рядами ячеек (8х12). В три ячейки планшета помещается взвесь микроорганизмов, полученных от больных пациентов. В качестве инокулята используют взвесь свежевыращенной, в соответствии с утвержденными рекомендациями [5, 6], культуры. Культуру, выращенную на поверхности плотной питательной среды, суспендируют и разводят 0,9% раствором хлорида натрия, или питательного бульона, до 10 ЕД по отраслевому стандартному образцу для визуального определения мутности бактерийных взвесей, а затем взвесь разводят еще в 10000 раз. Полученный инокулят, содержащий приблизительно 105 микробных клеток в 1 мл взвеси, с помощью стерильной пипетки по ГОСТ 20292-74Е или пипеточного дозатора фирмы "Labsystem" вносят по 0,1 мл в планшет в три свободные ячейки. Для контроля стерильности в четвертую ячейку вносят 0,2 мл питательного бульона. Далее в первую ячейку вносится раствор исследуемого антибактериального средства в объеме 0,1 мл таким образом, чтобы в полученном объеме содержалось то количество препарата, которое накапливается согласно литературным данным в пораженном органе больного при введении средней терапевтической дозы лекарства. Во вторую ячейку помещают также 0,1 мл раствора антибиотика, но уже в концентрации, накапливаемой в ткани при введении высшей терапевтической дозы (в 3-6 раз больше). Планшет закрывают крышкой и инкубируют при температуре 36
Формула изобретения
Способ прогнозирования клинической эффективности антибактериального средства методом разведений, отличающийся тем, что в ячейках планшета проводят инкубацию взвеси микробных клеток с антибактериальным средством, которое берут в двух концентрациях, соответствующих тем, которые создаются в органах-мишенях при введении средней и высшей терапевтических доз, учет результатов проводят визуально по появлению видимого роста в ячейках планшета, при этом "высокая" клиническая эффективность антибактериального средства устанавливается при отсутствии роста микроорганизмов в ячейках с большей и меньшей концентрациями, "неэффективная" при росте микроорганизмов в обеих ячейках и "вероятная при использовании высшей терапевтической дозы" при отсутствии роста в ячейке с большей концентрацией, а в ячейке с малой концентрацией наблюдается рост.РИСУНКИ
Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4NF4A Восстановление действия патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение
Дата, с которой действие патента восстановлено: 20.04.2009
Извещение опубликовано: 20.04.2009 БИ: 11/2009