Непористые микросферы для парентерального введения, способ их получения и суспензия на основе данных микросфер
Использование: в медицине, для парентерального введения путем инъекции фармацевтически активных веществ. Сущность изобретения: твердые непористые микросферы отсроченного действия, имеющие диаметр 5-300 мкм, содержат, по меньшей мере, одно фармацевтически активное вещество, заключенное в сферической структуре, сформированной,по меньшей мере, одним фармацевтически неактивным веществом-носителем, которое естественно присутствует в воспринимающем организме, является стабильным в твердом состоянии, по меньшей мере, до 60oC и растворяется медленнее в воспринимающей физиологической среде, чем фармацевтически активное вещество. Способ получения твердых непористых микросфер включает расплавление фармацевтически неактивного вещества-носителя, диспергирование фармацевтически активного вещества в расплаве в инертной атмосфере, распыление полученной дисперсии в виде тумана в замораживающей камере под давлением, в инертной атмосфере, при температуре от - 15 до - 50oC, и разделение полученных микросфер на фракции по размерам. Суспензия, предназначенная для введения путем парентеральной инъекции, содержит эффективное количество указанных микросфер, распределенных в фармацевтически приемлемом жидком векторе, причем фармацевтически активное вещество микросферы нерастворимо в указанной жидкой среде. Применение новых микросфер позволяет замедлять и пролонгировать эффект активных веществ, которые слишком быстро растворяются в физиологической среде (веществ, действующих на центральную или вегетативную нервную систему, таких как сосудорасширяющие, противогистаминные средства, гормоны, контрацептивы). 3 с.и 13 з.п. ф-лы, 13 ил.
Изобретение относится к способу усовершенствования контроля фармакокинетических и фармакологических характеристик фармацевтически активного вещества, которое может вводиться парентерально путем инъекции млекопитающим или другим животным. Оно относится также к твердым и непористым микросферам диаметром от 5 до 300 мкм, содержащим по крайней мере одно фармакологически активное вещество, заключенное в сферической структуре, образуемой по крайней мере одним фармацевтически неактивным веществом-носителем, причем указанное фармацевтически неактивное вещество-носитель может быть введено млекопитающему путем парентеральной инъекции, а также к использованию таких микросфер для изготовления формулы, предназначенной для парентерального введения путем инъекции.
Биологически активные вещества, слабо растворимые в физиологической среде, в настоящее время уже используются в виде суспензии частиц и вводятся путем парентеральной инъекции, что позволяет обеспечить медленное растворение, и тем самым эффект пролонгированного действия в организме человека или животного. Пример испытывали, имея ввиду изготовление вводимого внутримышечно контрацептива, смеси норетистерона и местранола в водной суспензии кристаллического порошка /J.Garza Hores etal. Contraception, may 1988, V 01. 35, No. 5, 471-481/. Вследствие, возможно, колебания размеров и неправильной формы частиц эти композиции известного уровня техники обладают, как правило, следующими недостатками: острый пик на кривой выделения активных веществ непосредственно после инъекции с последующим медленным спадом, что приводит к увеличению общей дозы, необходимой для достижения адекватного продолжительного эффекта; случайное образование в суспензии сгустков или корок; необходимость использовать во избежание риска закупорки выходного отверстия шприца иглы для подкожных вливаний большого диаметра. Для некоторых веществ непосредственный контакт активной частицы с окружающими живыми тканями может вызвать воспалительные реакции или повреждения. Замедленное растворение таких веществ достигается известными способами нанесения покрытия или микрокапсулирования. В патенте [3] описана композиция для парентерального применения, состоящая из микросфер из жира и/или воска, природного или искусственного происхождения, с низкой температурой плавления /от 40 до примерно 60oC/, в которых заключены частицы полипептида, например гормон роста. При введении таких композиций скоту в виде инъекции начало растворения гормона роста откладывается из-за жирового покрытия, так что его присутствие в организме животного продлевается, вызывая увеличение роста или лактации. При повышении температуры окружающей среды такие микросферы склонны размягчаться и деформироваться, слипаться или сливаться друг с другом, что может вызвать сложности при хранении или применении. В связи с тем, что содержание активного полипептида в частице ограничивается на практике 30-40% инъекции этих частиц имеют также тот недостаток, что в организм вводится определенное количество вещества-носителя, который является для данного организма чужеродным, и количество которого по крайней мере в 1,5-3 раза больше по сравнению с активным веществом. Известны другие способы нанесения покрытия или микрокапсулирования, некоторые из них описаны, например в "Encyclopedia of Chemical Technology, 3rd Edition, v.15, p. 470 to 493 /1981/, John Wiley and Sons. В патенте ЕР N 210875 описаны инъекции в тело радиоактивных стеклянных микрошариков с целью местного лечения раковых опухолей. Выведение вещества-носителя путем метаболизма внутренней среды организма может оказаться затруднительным; для лечения человека такое вещество приемлемо для перрорального введения и гораздо в меньшей степени -для введения путем парентеральных инъекций. Далее как контрацептивы использовались стероидные гормоны в виде подкожных имплантантов. Такие имплантанты, длиной от 0,5 до 5 см можно изготовить путем плавления гормона, в чистом виде или в смеси липоидным носителем, и придания ему в расплавленной состоянии определенной формы. Такие способы изготовления описаны, например, в [1] или в патенте с США N 4244949. В [1] описана затвердевшая смесь фармацевтически активного сериала и, например, холестерина в качестве носителя затвердевшая смесь имеет форму капель или полых шариков больших размеров. Продолжительность действия этих имплантантов может превышать один год, эта система непригодна, напротив, в тех случаях, когда желаемая продолжительность действия составляет только несколько недель, поскольку указанную систему приходится вводить на место путем надреза или с помощью трокара, а удалить путем иссечения. В заявке Франции [2] описан способ получения частиц лекарственного препарата неправильной формы, покрытых полимером. Полимер расплавляют и мелкоизмельченные частицы лекарства диспергируют в расплаве. Дисперсию распыляют, чтобы заморозить полимер, и получают мельчайшие частицы. Носителем для лекарственного препарата является твердый полиактидный полимер, который не присутствует в организме млекопитающего. Целью изобретения является создание формул отсроченного выделения для введения человеку или млекопитающим путем парентеральной инъекции, с помощью иглы, которая обеспечивает контролируемое выделение фармацевтически активных веществ и лишена недостатков, которыми отличаются известные суспензии частиц или микрокапсул. Эта цель достигается за счет использования способа, который включает приготовление указанного вещества в виде твердых непористых микросфер диаметром от 5 до 300 мкм, содержащих одно по крайней мере фармацевтически активное вещество, заключенное в сферической структуре, которая сформирована одним по крайней мере фармацевтически неактивным веществом-носителем, причем указанное вещество-носитель, формирующее сферическую структуру, естественно присутствует в организме указанного млекопитающего и стабильно в твердом состоянии до температуры по крайней мере 60oC, а также в физиологической среде указанного млекопитающего, причем кинетика растворения вещества носителя в организме млекопитающего-реципиента медленнее, чем кинетика выделения активного вещества в этом же организме, а также включает разделение указанных микросфер на калиброванные фракции по диаметрам, а также путем их использования для приготовления формул, предназначенных для парентерального введения путем инъекции. Под стабильностью в твердом состоянии до 60oC следует понимать не только то, что микросферы не плавятся, но что они также размягчаются и не слипаются. Под стабильностью в твердом состоянии, в контексте данного изобретения не следует также понимать, например, бесконечную стабильность стеклянных микросфер, но что они должны быть в достаточной степени стабильны так, чтобы порядок величины периода стабильности в этой среде /исчезновение микросфер происходит просто путем медленного растворения или в результате метаболической химической атаки/ был не меньше, чем желаемая продолжительность действия медицинского продукта: другими словами, кинетика растворения вещества-носителя в организме млекопитающего-реципиента не должна быть медленнее, чем кинетика выделения активного вещества в том же организме. В случае, когда для изготовления микросфер используется способ распыления/замораживания, вещество-носитель должно быть химически стабильно при температуре плавления, а также в расплавленном состоянии в одном по крайней мере интервале температур, который подходит для этой операции. Скорость растворения микросферы в среде данного растворителя является функцией величины радиуса сферы /с учетом соотношения между величинами объема, площади поверхности и радиуса сферы/. Согласно одному из аспектов данного изобретения, использование твердых непористых сфер позволяет получить точное значение соотношения масса/площадь поверхности частиц и таким образом путем выбора размера сфер, то есть радиуса или распределения величин радиусов регулировать контрольный параметр скорости выделения вводимого активного ингредиента или активных ингредиентов. Скорость растворения активных ингредиентов также зависит от структуры микросферы и, в частности, от доступности ее внутренности действию растворителя. Неактивное вещество, приобретающее в физиологической среде структуру, например, набухшего геля /например, фракции коллагена/, дает только небольшую отсрочку выделения активных веществ, тогда как вещество с компактной гидрофобной структурой обеспечивает максимальный эффект отсрочки выделения. Согласно другому аспекту данного изобретения, выбор молекулы, определяющей и структурирующей микросферу, позволяет получить эффект отсроченного выделения активных ингредиентов, продолжительность которого меняется от нескольких часов до нескольких недель. Если фармакологически активное вещество находится в веществе-носителе в виде твердого раствора /например, эвтектика/ или в виде действительно гомогенной суспензии диспергированных части /например, коллоиды/, размер которых мал по сравнению с диаметром микросферы /10-300
е/ подходят также некоторые стероиды (Dexamethasone, Betamethasone). Растворение в воде некоторые анальгатиков, даже тех, которые подобно индометацину или напроксену, плохо или медленно растворяются в воде, можно еще более замедлить и отсрочить, внедряя эти вещества в структуру холестерина /это позволяет увеличить промежутки времени между инъекциями настолько, насколько возрастает единичная доза/. Данное изобретение далее будет более раскрыто с помощью иллюстрирующих фигур и примеров. Оно, однако, ими не ограничивается. На фиг. 1 представлена схема изготовления холестериновых микросфер; на фиг. 2 микрофотография /электронный микроскоп/, холестериновых микросфер; на фиг. 3 распределение по размерам частиц фракции холестериновых микросфер /средний диаметр 15m м/; на фиг.4 распределение по размерам частиц фракции холестериновых микросфер /средний диаметр 25 m м/; на фиг.5 - экспериментальная установка для определения скорости растворения микросфер; на фиг.6 и 7 профиль растворения микросфер, содержащих 17- b -эстрадиол с холестерином в качестве носителя /фиг.6/, по сравнению с профилем растворения 17- b -эстрадиола в виде кристаллов /фиг.7/; на фиг.8 и 9 профиль растворения микросфер, содержащих диазепам с холестерином в качестве носителя /фиг.8/, по сравнению с профилем растворения кристаллов диазепама /фиг.9/; на фиг.10 уровни содержания диазепама в плазме кроликов, полученные после инъекции раствора /кривая О/ суспензии кристаллов /кривая 1/ и микросфер /кривая 2/ диазепам /холестерин; на фиг.11, 12, 13 уровни содержания 17- b -эстрадиола, в плазме кроликов, полученные в результате соответственно инъекции раствора /кривая О/, доведенной до микронного размера смеси эстрадиол/холестерин /кривая I/ и микросфер эстрадиол/холестерин /кривая 2/. Пример 1. Изготовление холестериновых микросфер. Обозначения соответствуют фиг.1. Предварительно нагретый азот подается под давлением через входную трубку А1 в распылительное устройство и пересекает снабженную терморегулятором нагревательную зону В, где его температура доводится до 160-190oC, после чего он поступает в распылитель Д. Распылитель Д связан посредством трубки с нагреваемой камерой С, в которой в расплавленном состоянии находится холестерин /т. пл. 148oC/ под давлением азота /ввод А2/. Холестерин переносится током азота и смешивается с последним, так что на выходе из сопла распылителя он превращается с последним, так что на выходе из сопла распылителя он превращается в туман, который проникает в камеру F для распыления/замораживания. В резервуаре Е находится жидкий азот, который испаряется и проникает в виде ультрахолодного газа через несколько трубок, с высокой скоростью, в камеру распыления/замораживания F, где он встречается с холестериновым туманом. Капельки непосредственно после выхода из сопла распылителя, попадают в окружение тока ледяного газа, в результате чего они кристаллизуются в микросферы и что предохраняет их от контакта с боковыми стенками до полного отверждения. Температура на выходе камеры распыления/замораживания колеблется от -15 до -50oC. Все микросферы, образование которых происходит к камере F, отличаются совершенной сферической формой. На выходе камеры F расположены два циклонных сепаратора G1 и G2 /известной конструкции/, соединенные последовательно. Отделение микросфер происходит в коллекторах H1 и H2; выйдя из циклонов, газы проходят через очистительный фильтр 1, в котором поддерживается небольшое разрежение относительно давления, преобладающее в первом циклоне, с помощью насоса. На фиг.2 показана микрофотография фракции выделенных холестериновых микросфер /электронный микроскоп/. Пример 2. Распределение частиц по размерам. Разделили на фракции холестериновые микросферы, изготовленные в указанных выше рабочих условиях. На фиг. 3 и 4 показаны распределения частиц по размерам соответственно фракций среднего размера 15 и 25 м. Пример 3. Изготовление микросфер 17- b -экстрадиол/холестерин. Способ описанный в примере 1, используется для смеси экстрадиол/холестерин, при весовом соотношении 1/9. Рабочие условия: плавление при 149oC в атмосфере азота; разбрызгивание с помощью клапана при давлении воздуха 2,5 psi /200 г/см3/; замораживание воздухом при -20oC, под давлением 4 кг/см2; отделение с помощью циклонов; отбор в водной среде и путем просеивания по размерам частиц. Пример 4. Изготовление микросфер диазепам/холестерин. Способ, описанный в примере 1, используется для смеси диазепам/холестерин при весовом соотношении компонентов 1/2. Рабочие условия: плавление при 138oC в атмосфере азота; разбрызгивание с помощью клапана, при давлении воздуха 1,5 psi /100 г/см2/; замораживание воздухом при -20oC, под давлением 4 кг/см2; отделение с помощью циклонов; отбор в водной среде и просеиванием согласно размерам частиц. Пример 5. Изготовление микросфер кофеин/холестерин. Способ согласно описанию примера 1 используется для смеси кофеин/холестерин, при весовом соотношении компонентов 1/2. Рабочие условия: плавление при 165oC в атмосфере азота; разбрызгивание с помощью клапана, при давлении воздуха 2 psi /140 г/см2/; замораживание воздухом при -20oC, под давлением 4 кг/см2; отделение с помощью циклонов; отбор в водной среде и путем просеивания по размерам частиц сравнительный УФ- и ИК-спектрофотометрический анализ до и после образования микросфер. Необходимо убедиться, что в ходе процесса распыления замораживания не произошло химического повреждения веществ, которое могло бы привести к модификации их терапевтических свойств. Сравнивали с помощью УФ- и ИК-спектрофотометрии исходные материалы /кристаллы/ и микросферы, полученные способом распыления-замораживания. Всегда УФ-спектры должны быть совместимыми дуг с другом и ИК-спектры должны соответствовать. При появлении различий в ИК-спектрах следует проверить, не обусловлены ли они явлением полиморфизма, с помощью установки для ВЭЖХ с набором диодов в качестве детектора. Используется также дифференциальный термический анализ не только для проверки точек плавления, но также и для определения, не имеют ли место эндотермические или экзотермические переходы или вследствие модификаций структуры, или вследствие полиморфизма, или в результате инициируемых теплом химических реакций. Оборудование, используемое для ультрафиолетовой спектрографии: Hewelt Paскаго, модель 8452А, с фотодиодной установкой и кварцевой ячейкой, с пучком 0,1 см. Растворители: этанол для 17-бета-эстрадиола и холестерина; 0,1 и HCI для дизепама, бутилхиосцина бромида и кофеина. Результаты показывают отсутствие следов модифицирования. Оборудование, используемое для инфракрасной спектрофотометрии: инфракрасный спектрофотометр с Фурье-преобразованием Nicolet 205 PT-IR. Дисперсионная среда: бромид калия. Хроматография: установка ВЭФХ с набором фотодиодов в качестве детектора, модель Waters 990, Nec powermate 2 Workstation. Результаты показывают отсутствие модифицирования после образования микросфер из холестерина, 17-бета-экстрадиола и диазопема. Напротив, в случае бутилхиосцин бромина оказывается, что микросфероидизация вызывает химическое модифицирование. Термический анализ: калориметр Shimadru DSC 50 и Workstation CR4A. На дифференциальных термограммах не обнаружено признаков разложения 17-бета-эстрадиола, диазепама и кофеина. На фиг. 5 показана экспериментальная установка для проведения in vitro испытаний на растворение. Инфузионная ячейка 1, в которой содержится проба, питается от резервуара /при перемешивании/ с растворяющей средой 2; все это помещается на водяной бане 3. Оптическую плотность среды регистрируют с помощью спектрофотометра 4, после чего среда возвращается в резервуар. Пузырьковая ловушка 5 и перистальтический насос 6 довершают схему. Следующие примеры демонстрируют сравнительную воспроизводимость начальных участков кривых растворения кристаллов и микросфер сравнимого размера и одного и того же продукта. Несколько /3-6/ измерительных схем /ячейки растворения и трубки/, в которых содержится идентичные пробы, обрабатываются параллельно одним и тем же перистальтическим насосом и одновременно измеряются. Пример 6. Растворение микросфер 17-бета-эстрадиол/холестерин /1/9/. Используется оборудование, изображенное на фиг.5. Растворяющая среда H2О, чистоты ВЭФХ, с 0,01% Tween 80; проба 50 мг; размер частиц 50-100 мкм; интервал отбора проб: 0, 3, 6, 9, 12, 24 ч; длина волны спектрофотометрии 282 нм. На фиг. 6 приведены кривые растворения микросфер. Их можно сравнить с кривой растворения материала, состоящего из тех же компонентов и полученного плавлением, охлаждением, раздавливанием и механическим измельчением до микронных размеров /фиг.7/. Пример 7. Растворение микросфер диазепам/холестерин /1/2/. Растворяющая среда H2О, качества ВЭЖХ, с 0,01% Tween 80, проба 50 мг; размер частиц 50-100 мкм; интервал отбора проб: 0, 1, 2, 4, 8 ч; длина волны спектрофотометрии 286 нм. Кривые растворения микросфер приведены на фиг.8, а кривые растворения измельченных до микронных размеров кристаллов показаны на фиг.9. Пример 8. Растворение микросфер бутилхиосцина бромид/холестерин /1/4/. Используется оборудование, изображенное на фиг.5. Растворяющая среда H2О, чистоты ВЭФХ, с 0,01% Tween 80; проба 50 мг; размер частиц 50-100 мкм; интервал отбора проб: 0, 1, 2, 4, 8 ч; длина волны спектрофотометрии 284 нм. Кривые растворения /не приводятся/ очень похожи на предыдущие. Пример 9. Формулы. Формула N 1,г:
Микросферы 17-бета-эстрадиол/холестерин* 25
Полиэтиленгликоль 800 20
Карбоксиметилцеллюлозы натрий 1,66
Полисорбат 80 2,0
Попил-4-гидроксибензоат /propylparabene/ 0,14
NaCl 1,2
H2O cbp 1
*эквивалентно 2,5 мг 17-бета-эстрадиола
Формула N 2
Микросферы диазепам/холестерин 33% 33,3
Полиэтиленгликоль 4000 3,0
NaCl 8,5
Бензиловый спирт 9,0
H2О cbp 1 мл
Гидроксид натрия HCI: достаточно до pH 5-6
*эквивалентно 10 мг диазепама,
Пример 10.Исследования на кроликах уровня содержания в плазме 17-бета-эстрадиола. Исследования включают сравнительную оценку эффекта, который оказывает на уровень содержания в плазме кроликов парентеральное введение эстрадиола в виде маслянистого раствора /фиг.11/, в виде водной суспензии микросфер эстрадиол/холестерин /фиг.13/, в соответствии с формулой N3. Десяти взрослым самцам кроликов новозеландской породы, среднего веса 3,5 кг, вводили в виде единичной внутримышечной дозы 5 мг эстрадиола. Пробы отбирали через 1, 2, 4 и 24 ч в течение 20 дней, а затем каждые три дня до истечения 30 дней. Пробы по 2 мл отбирали пункцией из вены, подвергали центрифугированию и хранили при 20oC до проведения иммунологического радиоанализа. Пример 11.Сравнительное изменение уровня содержания в плазме диапазона, введенного в виде масляного раствора и в виде суспензии микросфер. /Формула N 2/. Подопытные животные: кролики новозеландской породы, возрастом около 5 месяцев и весом в среднем 3,7 кг. Контрольная проба представляет собой 5 мл крови, взятой путем сердечной пункции, после чего вводили внутримышечно в заднюю правую ногу 2 мл испытываемой формулы. Пробы для анализа отбирали через 30 мин в течение 2 ч и через 60 мин до истечения 6 ч. В некоторых случаях в зависимости от кинетических характеристик медицинского продукта отбирали дополнительные пробы. Пробы для анализа объемом 2 мл, полученные также сердечной пункцией, помещали в Vacutainer, добавляли гепарин, подвергали смесь центрифугированию при 300 об/мин в течение 10 мин, отделяли плазму и замораживали ее в криотубах при -20oC до проведения анализа. Условия проведения хроматографии:
УФ-детектор на 220 нм
Колонка 10-m м Novapack C18
Подвижная фаза: фосфатный буфер с pH 3,5/ацетонитрил состава 59:41 об/об
Скорость потока: 1,6 мл/мин
Внутренний стандарт: ибупрофен
На фиг.10 показано изменение уровней содержания в плазме в течение 30 ч после инъекции соответственно масляного раствора /кривая О/, суспензии микросфер по формуле N 2 примера 8 /кривая 2/ и суспензии частиц неправильной формы /так называемых кристаллов/ аналогичной формулы, полученных в результате смешивания холестерина и диазепама, плавления смеси, ее замораживания и измельчения на мелкие частицы /кривая 1/. Можно видеть, что использование микросфер позволяет исключить резкий пик уровня в плазме в начальный момент после инъекции. В заключение можно сказать следующее, вышеописанные результаты показывают, что в начале процесса растворения фармацевтически активные вещества характеризуются гораздо более воспроизводимыми численными величинами и гораздо более гладкими профилями, если их вводить в виде партий калиброванных микросфер, а не в виде частиц случайной формы. Это позволяет более точно вычислить фармацевтически эффективную дозу. Кроме того, исчезновение первоначального пика растворения /или по крайней мере его резкое уменьшение по сравнению с кристаллами или частицами случайной формы/, а также отсроченное и очень сильно растянутое во времени растворение позволяет вычислить повышенную единичную дозу, предназначенную для введения через большие промежутки времени. Далее вышеописанные результаты показывают, что структуру такого типа можно использовать также для изготовления лекарств с относительно коротким периодом эффективности, а именно от нескольких часов до нескольких дней /как, например, у анальгетиков/, а также для веществ, предполагаемый период эффективности которых продолжается несколько недель. Среди последних можно упомянуть, в частности, применение половых гормонов /типа прогестерона или 17- b -эстрадиола/ для изготовления контрацептива, предназначенного для ежемесячных парентеральных инъекций, или для изготовления послеродового контрацептива, или для изготовления медицинского продукта для парентеральных инъекций, предназначенного для предупреждения остеопороза у женщин в менопаузе. Описанные выше способ изготовления, полученные сферические структуры и формулы, а также их применение парентеральным путем в виде инъекции не ограничиваются естественно веществами, которые выше были приведены в качестве примеров, а могут быть использованы для всех фармацевтически активных веществ, химически стабильных в процессе доведения до размеров порядка микрона, при условии, что фармацевтические модификации обеспечивают микросферам преимущество в смысле терапевтического действия или в смысле удобства /кратковременное или длительное действие в зависимости от диаметра, регулирование уровня содержания в плазме/ и что вводимые дозы не превышают разумного объема. В зависимости от предполагаемого применения можно выбрать способ введения: подкожная инъекция, внутримышечная инъекция, внутрисуставная инъекция, интраспинальная инъекция.
Формула изобретения
100 мкм. 3. Форма по п. 1 или 2, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит фармацевтически приемлемые добавки. 4. Форма по любому из пп. 1 3, отличающаяся тем, что указанный носитель выбран из веществ, которые являются стабильными в расплавленном состоянии, и фармацевтически активное вещество выбрано из веществ, химически стабильных в расплавленном веществе-носителе. 5. Форма по п. 4, отличающаяся тем, что носитель в микросфере выбран из группы веществ, состоящей из копростерина, гликоколевой кислоты, холестерина и эфиров холестерина. 6. Форма по п. 5, отличающаяся тем, что фармацевтически активное вещество в микросфере выбрано из группы веществ, которые действуют на центральную нервную систему, таких, как транквилизаторы, средства против болезни Паркинсона, средства против конвульсий и наркотики. 7. Форма по п. 5, отличающаяся тем, что фармацевтически активное вещество в микросфере выбрано из группы веществ, которые действуют на вегетативную нервную систему, таких, как противорвотные средства и гастрокинетические лекарства. 8. Форма по п. 5, отличающаяся тем, что фармацевтически активное вещество в микросфере выбрано из периферических сосудорасширяющих средств. 9. Форма по п. 5, отличающаяся тем, что фармацевтически активное вещество в микросфере выбрано из противогистаминных средств и антагонистов Н2-рецепторов. 10. Форма по п. 5, отличающаяся тем, что фармацевтически активное вещество в микросфере выбрано из стероидов. 11. Форма по п. 5, отличающаяся тем, что фармацевтически активное вещество в микросфере выбрано из анальгетиков. 12. Способ получения дозированной формы с отсроченным выделением фармацевтически активного вещества, включающий расплавление фармацевтически неактивного вещества-носителя, диспергирование фармацевтически активного вещества в расплаве, распыление полученной дисперсии до мелких частиц и их замораживание, отличающийся тем, что при получении твердых непористых микросфер по п. 1 фармацевтически активное вещество диспергируют в расплавленном веществе-носителе в инертной атмосфере, дисперсию распыляют в виде тумана в замораживающей камере под давлением, в инертной атмосфере, при температуре (-15) (-50)oС, полученные микросферы разделяют на фракции по размерам. 13. Способ по п. 12, отличающийся тем, что микросферы разделяют на фракции по размерам таким образом, что более 70% микросфер имеют диаметр 70
130 от заданного значения диаметра. 14. Суспензия, предназначенная для введения путем парентеральной инъекции, состоящая из микросфер, распределенных в фармацевтически приемлемом жидком векторе, отличающаяся тем, что она содержит эффективное количество микросфер по любому из пп. 1 11, а фармацевтически активное вещество микросферы нерастворимо в указанной жидкой среде. 15. Суспензия по п. 14, отличающаяся тем, что указанная жидкая среда представляет собой водные растворы солей, например физиологический раствор или масла. 16. Суспензия по п. 14, отличающаяся тем, что она содержит фракцию калиброванных микросфер по п. 1, содержащих в качестве фармацевтически активного вещества 17-

РИСУНКИ
Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5, Рисунок 6, Рисунок 7, Рисунок 8, Рисунок 9, Рисунок 10, Рисунок 11, Рисунок 12, Рисунок 13