Способ определения терапевтической чувствительности к кетотифену больных с аллергическими заболеваниями
Использование: в медицине, а именно в аллергологии, для отбора больных с аллергическими заболеваниями, у которых лечение кетотифеном будет заведомо эффективным. Задача: создание способа, обеспечивающего возможность до начала лечения in vitro выявлять больных, лимфоциты которых обладают специфическими морфо-функциональными особенностями, обуславливающих совпадение клинически значимых пространственных и энергетических характеристик лимфоцита и препарата. Сущность изобретения: перед началом терапевтического воздействия исследуют кровь больного in vitro. При этом взвесь лимфоцитов больного делят на две части, в контрольную пробу вносят растворитель, в опытную пробу вносят раствор кетотифена в конечной концентрации 100 мг/мл. Инкубируют обе пробы в термостате в течение 2 ч, затем подсчитывают содержание неадгезированных лимфоцитов в каждой пробе и при снижении их количества в опытной пробе на 30% и более по сравнению с контрольной определяют терапевтическую чувствительность больного к кетотифену. 4 табл.
Изобретение относится к медицине, а именно к аллергологии, и может быть использовано для отбора больных с аллергическими заболеваниями, такими как атопический дерматит, респираторные аллергозы, крапивница, отеки Квинке и т. д. у которых лечение кетотифеном будет заведомо эффективным.
Наиболее близким к изобретению по совокупности существенных признаков является способ определения терапевтической чувствительности к кетотифену больных с аллергическими заболеваниями (1). В способе-прототипе кетотифен назначают всем больным с подтвержденным диагнозом аллергического заболевания в фармакопейно принятых дозировках и режиме. Эффективность терапии у каждого конкретного больного оценивают по уменьшению клинических симптомов заболевания, таких как уменьшение кожного зуда у больных атопическим дерматитом, урежение приступов бронхоспазмов при респираторных аллергозах, уменьшение симптомов ринита и конъюктивита и т.д. через 3-4 недели от начала применения кетотифена. В случае наличия индивидуальной реакции больного, проявляющейся в редукции симптоматики под влиянием препарата, проводят полный курс лечения кетотифеном в течение 4-12 недель. Способ-прототип не позволяет получить технический результат, достигаемый при использовании заявленного способа. Это обусловлено тем, что известный способ (1) представляет собой клиническую оценку результатов уже произведенного воздействия на организм больного. Несмотря на то, что максимальная концентрация кетотифена в плазме крови человека достигается уже через 2-4 ч после приема препарата (2), для развития его клинического действия необходим более длительный срок, составляющий 4-10 недель (3). Отсутствие возможности оценивать эффективность кетотифена по состоянию "маркеров" клеточного или субклеточного уровня, специфически реагирующих на воздействие рассматриваемого препарата, приводит к невозможности прогнозировать результат лечения до начала воздействия, а также к относительно большой длительности процесса определения терапевтической чувствительности каждого конкретного больного к кетотифену. Кроме того, учитывая, что клинический эффект кетотифена наблюдается лишь у 50-60% больных аллергическими заболеваниями (4), необходимость обязательного приема лекарства в течение 3-4 недель для выяснения целесообразности его использования не позволяет избежать проявления побочных эффектов у больных с отсутствием терапевтической чувствительности к препарату. Задачей изобретения является создание способа определения терапевтической чувствительности к кетотифену больных с аллергическими заболеваниями, обеспечивающего возможность до начала лечения in vitro выявлять больных, лимфоциты которых обладают специфическими морфо-функциональными особенностями, обуславливающими совпадение клинически значимых пространственных и энергетических характеристик лимфоцита и препарата. Решение поставленной задачи достигается тем, что в способе определения терапевтической чувствительности к кетотифену больных аллергическими заболеваниями путем исследования реакции организма на воздействие препарата, согласно изобретению перед началом терапевтического воздействия исследуют кровь больного in vitro, при этом взвесь лимфоцитов больного делят на две части, в контрольную пробу вносят растворитель, в опытную пробу вносят раствор кетотифена в конечной концентрации 100 нг/мл, инкубируют обе пробы в термостате в течение 2 ч, затем подсчитывают содержание неадгезированных (неприлипших) лимфоцитов в каждой пробе и при снижении их количества в опытной пробе на 30% и более по сравнению с контрольной определяют терапевтическую чувствительность больного к кетотифену. Выбор оптимальной концентрации кетотифена, добавляемого к опытной пробе крови при использовании заявляемого способа, проводили путем исследования влияния различных концентраций кетотифена на точность определения терапевтической чувствительности больных к препарату, т.е. на точность прогноза. Были исследованы две группы детей в возрасте от 4 мес до 15 лет с подтвержденным диагнозом аллергического заболевания. Диагноз был предварительно поставлен по результатам комплексного обследования больных, включающего сбор анамнеза, оценку клиники заболевания, постановку скарификационных и провокационных проб с аллергенами и т.д. Для исследования были отобраны дети, у которых в анамнезе отмечался или не отмечался положительный терапевтический эффект при лечении кетотифеном. При этом отбирали детей, у которых лечение кетотифеном было произведено не менее года назад, чтобы заведомо исключить последействие препарата (5). Обследовано две группы больных: I группа больные аллергическими заболеваниями, у которых кетотифен оказывал хороший лечебный эффект (т.е. значительно уменьшал или ликвидировал клинические симптомы) 41 человек; II группа больные аллергическими заболеваниями, у которых кетотифен не оказывал влияния или вызывал обострение заболевания 27 человек. Клинический эффект кетотифена оценивали не ранее, чем через 1 мес (1) после приема препарата в фармакопейне принятых дозировках и режиме (2). Результаты исследований представлены в табл.1. Из данных табл. 1 видно, что именно концентрация кетотифена 100 нг/мл обеспечила наибольшую точность прогноза в группе больных с клинически подтвержденным хорошим лечебным эффектом кетотифера (I группа) при отсутствии ложноположительных результатов в группе с клиническими подтвержденным отсутствием терапевтической чувствительности к препарату (II группа). Для выявления интервала прогностически значимых различий количества неприлипших (неадгезированных) лимфоцитов в опытной и контрольных пробах, обеспечивающих наибольшую точность определения, с использованием заявленного способа были обследованы две группы детей с подтвержденным диагнозом аллергического заболевания: I группа больные аллергическими заболеваниями, у которых кетотифен оказывал хороший лечебный эффект 41 человек; II группа больные аллергическими заболеваниями, у которых кетотифен не оказывал лечебного эффекта или вызывал обострение заболевания 27 человек. Результаты представлены в табл.2. Из данных табл.2 следует, что прогностически значимым является различие количества неприлипших лимфоцитов в опытной и контрольной пробах, равное 30% и более, т.к. при этих значениях достигается максимальное количество подтвержденных клинически положительных результатов терапевтического воздействия кетотифена (I группа) при отсутствии ложно-положительных результатов в группе с клинически подтвержденным отсутствием лечебного эффекта препарата (II группа). Для выбора оптимального срока инкубации проб в термостате, обеспечивающего наибольшую точность прогнозирования, обследованы две группы детей с подтвержденным диагнозом аллергического заболевания: I группа больные с аллергическими заболеваниями, у которых кетотифен оказывал хороший лечебный эффект 41 человек; II группа больные с аллергическими заболеваниями, у которых кетотифен не оказывал лечебного эффекта или вызывал обострение заболевания 27 человек. Результаты представлены в табл.3. Из данных табл.3 следует, что оптимальным сроком инкубации проб в термостате является срок 2 ч, т.к. при таком сроке достигается максимальное количество подтвержденных клинически положительных результатов в I группе при отсутствии ложно-положительных результатов во II группе. Достижение обеспечиваемого изобретением технического результата обусловлено следующим. Известно, что препарат кетотифен (задитен) (4,9-дигидро-4 (1-метил-4-пиперидинилиден-1OH-бензо [4,5] циклогепта[1,2-b] -тиофен-10-он(гидрофумарат)) применяется для лечения астмы и аллергии и обладает антигистаминным действием, осуществляющимся за счет блокады H1-гистаминовых рецепторов, а также противовоспалительным действием, обусловленным ингибированием высвобождения биологически активных веществ из тучных клеток, таких как медленно реагирующее вещество анафилаксии и фактор, активирующий тромбоциты (2,6). При анализе патентной и научно-медицинской литературы не обнаружено сведений о наличии у кетотифена способности влиять на адгезивные свойства лимфоцитов, а также данных о взаимосвязи этого свойства препарата с терапевтической чувствительностью к нему больных с аллергическими заболеваниями. Известно, что при воздействии причинно-значимого аллергена на лимфоциты крови больных аллергией тормозится адгезия этих клеток к пластику или стеклу (7), т.е. под влиянием аллергена в надосадочной жидкости увеличивается количество неприлипших клеток. В настоящее время механизм этого явления недостаточно ясен, поскольку имеется несколько относительно противоречивых точек зрения. Одна из теорий, объясняющих снижение адгезии лимфоцитов под влиянием аллергена, базируется на экспериментальных данных, свидетельствующих об изменении синтеза и/или экспрессии адгезивных молекул на лимфоцитах в присутствии аллергена (8). По-видимому, за счет адгезивных свойств клеток (в т.ч. лейкоцитов и лимфоцитов) и происходит генерализация аллергического воспаления, которое, как правило, не ограничивается местом действия аллергена, а захватывает большие территории, а часто и другие органы и ткани, а не только те, на которые действовал аллерген. Используя метод подобия, можно предположить, что именно выявленной авторами изобретения способностью кетотифена увеличивать адгезивные свойства лимфоцитов и объясняется его противоаллергическое действие. Увеличивая "прилипаемость" лимфоцитов, препарат способствует локализации аллергической реакции и препятствует "диссеминации" аллергического воспаления. Однако экспериментальные исследования авторов заявленного решения показали также, что обнаруженное свойство кетотифена проявляется избирательно, причем терапевтическое действие препарат оказывает только у тех больных, у которых в его присутствии увеличивается адгезия лимфоцитов. Это можно объяснить тем, что по-видимому, лимфоциты некоторых больных аллергическими заболеваниями обладают специфическим морфо-функциональными особенностями, когда пространственная структура внешней фестончатой оболочки лимфоцита и обусловленная ею направленность сложного энергетического поля лимфоцита соответствуют пространственной конфигурации и энергетическим характеристикам кетотифена. В этом случае при воздействии препарата происходит усиление функционирования специфических активных центров такого лимфоцита, что выражается в увеличении экспрессии и/или синтеза адгезивных молекул, в связи с чем у этих больных кетотифен оказывает свой лечебный эффект. У больных, лимфоциты которых лишены этих особенностей, препарат неэффективен. Таким образом, именно выявленная авторами предложенного способа взаимосвязь между клиническим эффектом кетотифена и его способностью увеличивать адгезивные свойства лимфоцитов, обладающих специфическими морфо-функциональными особенностями, обуславливающими совпадение их пространственных и энергетических характеристик с пространственными и энергетическими характеристиками препарата, позволяет с помощью реакции in virto определять терапевтическую чувствительность к препарату у каждого конкретного больного перед началом воздействия и отбирать больных, у которых применение рассматриваемого лекарственного средства будет заведомо эффективным. При этом из известного уровня техники не выявляется влияния предписываемых изобретением преобразований, характеризуемых отличительными от прототипа существенными признаками, на достижение технического результата. Способ осуществляют следующим образом. У больного утром натощак берут 1 мл крови из пальца или из вены в пробирку, содержащую 0,05 мл гепарина в концентрации 200 ед/мл (конечная концентрация гепарина в крови 10 ед/мл). Пробирку встряхивают для смешивания крови с гепарином и по методике (7) на градиенте плотности фиколл-верографии выделяют лимфоциты, дважды отмывают их средой Хенкса и один раз средой 199 путем центрифугирования при 1500 об/мин. в течение 10 мин. Затем ресуспендируют лимфоциты в среде 199 до концентрации 106 клеток/мл. В контрольную пробирку вносят 0,1 мл среды 199, в опытную пробирку вносят 0,1 мл раствора кетотифена на среде 199 в концентрации 200 нг/мл. В контрольную и в опытную пробирки добавляют по 0,1 мл суспензии лимфоцита (конечная концентрация кетотифена в опытной пробирке 100 нг/мл). Обе пробирки контрольную и опытную помещают в термостат при 37oC на 2 ч. По окончании инкубации пробирки вынимают из термостата и подсчитывают количество неприлипших лимфоцитов в жидкости, содержащейся в каждой пробирке, с помощью камеры Горяева (подсчет ведут в 100 больших квадратах сетки камеры). Определяют на сколько процентов количество лимфоцитов в опытной пробе меньше, чем в контрольной по формуле:
Ло количество лимфоцитов в опытной пробе. При снижении числа лимфоцитов в опытной пробе на 30% и более по сравнению с контрольной определяют терапевтическую чувствительность к кетотифену у больного с аллергическим заболеванием. Изобретение иллюстрируется следующими примерами. Пример 1. Люба И. 8 лет, история болезни N 6784, поступила в больницу с диагнозом "Диффузный нейродермит. Пищевая аллергия на молоке и облигатные аллергены". Из анамнеза болезни известно, что девочка больна с 2-месячного возраста: после прекращения грудного вскармливания и перевода на искусственное вскармливание молочными смесями появились изменения на коже по типу детской экземы, которые к 3 годам трансформировались в нейродермит. Ухудшение состояния кожи отмечено при употреблении коровьего молока, яиц, рыбы, апельсинов, крепких бульонов, копченостей. Гипоаллергенная диета с исключением молока и облигатных аллергенов, соблюдавшаяся в течение 3 мес, предшествующих госпитализации, не привела к улучшению состояния ребенка. Ранее больная кетотифен не получала. При осмотре в день поступления в больницу больная предъявляла жалобы на выраженный кожный зуд. Состояние удовлетворительное. Правильного телосложения, достаточного питания. На коже всего тела шелушение, обилие расчесов с гемморагическими корочками, в подколенных ямках, локтевых сгибах, на шее кожа лихенизирована, имеются проявления периорального дерматита, в углах рта трещины. Слизистые, зев чистые. Границы сердца не расширены, тоны ритмичные, пульс 80 уд/мин. Перкуторно над легкими ясный легочный звук, дыхание везикулярное, хрипов нет. Живот мягкий, безболезненный, печень и селезенка не увеличены. Физиологические отправления в норме. На второй день после поступления в больницу больная обследована с помощью заявленного способа. Утром натощак у больной из вены взяли 1 мл крови в пробирку, содержащую 0,05 мл гепарина в концентрации 200 ед/мл (конечная концентрация гепарина в крови составила 10 ед/мл). Пробирку встряхнули для смешивания крови с гепарином и по методике (7) на градиенте плотности фиколл-верографии выделили лимфоциты, дважды отмыли их средой Хенкса и один раз средой 199 путем центрифугирования при 1500 об/мин в течение 10 мин. Затем ресуспендировали лимфоциты в среде 199 до концентрации 106 клеток/мл. В контрольную пробирку внесли 0,1 мл среды 199, в опытную пробирку внесли 0,1 мл раствора кетотифена на среде 199 в концентрации 200 нг/мл. В контрольную и в опытную пробирки добавили по 0,1 мл суспензии лимфоцитов (конечная концентрация кетотифена в опытной пробирке составила 100 нг/мл). Обе пробирки контрольную и опытную поместили в термостат при 37oC на 2 ч. По окончании инкубации пробирки извлекли из термостата и подсчитали количество неприлипших лимфоцитов в каждой пробирке с помощь камеры Горяева (подсчет вели в 100 больших квадратах сетки камеры). Количество неприлипших лимфоцитов в 100 квадратах сетки Горяева в контрольной пробе составила 83, а опытной 36, т.е. в опытной пробе лимфоцитов было на


Формула изобретения
РИСУНКИ
Рисунок 1, Рисунок 2