Способ соединения нуклеозидов 3'-5'-межнуклеотидным силильным звеном
Использование: в химии нуклеотидов или их аналогов. Сущность изобретения: способ соединения нуклеозидов 3'-5'-межнуклеотидным силильным звеном взаимодействием 3'-силилированного-5'-защищенного нуклеозида с незащищенным нуклеозидом в растворителе в присутствии основного катализатора, создающего стерические помехи. Силилированные и незащищенные нуклеозиды могут быть либо мономерными нуклеозидами, либо концевыми нуклеозидами олигонуклеотидов или олигонуклеотидных аналогов. 14 з.п. ф-лы.
Настоящее изобретение имеет отношение к методу соединения нуклеозидов силоксановым мостиком, включающему взаимодействие 3-силилированного нуклеозида с незамещенным нуклеозидом. Кроме того, настоящее изобретение связано с методами синтеза олигонуклеотидных аналогов, имеющих, по крайней мере, один силоксановый межнуклеотидный мостик.
Нуклеиновые кислоты, РНК и ДНК, являются природными олигонуклеотидами. Употребляемый здесь термин "олигонуклеотид" означает гомополимерную или гетерополимерную последовательность нуклеозидов, в которых нуклеозиды соединены фосфодиэфирным мостиком. Благодаря успехам технологии олигонуклеотиды, содержащие несколько сот нуклеозидов или оснований, теперь могут быть получены синтетическим путем. Синтез олигонуклеотидов: A Practical Approach, ed. by M.J. Gait, IRL Press, Washington, D.C (1984). Синтетические олигонуклеотиды имеют большое научное и терапевтическое применение. Синтетические олигодезоксинуклеотиды, например, широко используются в технологии рекомбинантных ДНК. [Gait, supra at 1. Недавно было показано, что синтетические олигонуклеотиды имеют терапевтическое значение в качестве антисмысловых агенов, ингибирующих экспрессию гена. [Uhlmann, E. and Peyman, A. Chemical Reviews, 90/4/:544-583 /1990/. Антисмысловой агент это соединение, которое связывается или гибридизируется с нуклеотидной последовательностью целевой нуклеиновой кислоты РНК или ДНК, чтобы ингибировать функцию указанной целевой нуклеиновой кислоты. Благодаря способности гибридизироваться как с РНК, так и с ДНК, антисмысловые агенты могут вмешиваться в экспрессию гена на уровне транскрипции, процессинга РНК или трансляции. В настоящее время, однако, расширение практического научного и терапевтического применения антисмысловых технологий затрудняется рядом технических проблем. (См. например. Klausnem, A. Biotechnology 8:303-304,1990; Armstrong, L. Business Week, March 5, 1990). Эти проблемы включают /1/ расщепление антисмысловых агентов эндогенными нуклеазами; /2/ высокую стоимость их производства; /3/ недостаточно специфическую гибридизацию с целевой нуклеиновой кислотой; /4/ стерическую тендентичность агентов, обусловливающую наличием хиральных фосфорных центров и /5/ малая эффективность транспорта всех агентов к желательным мишеням, объясняемая, например, неподходящими коэффициентами растворимости, мембранным транспортом и жизненным циклом клетки. Один подход к приготовлению антисмысловых агентов, которые стабильны, устойчивы к действию нуклеаз, недороги в получении и которые могут быть доставлены к целевым нуклеиновым кислотам и гидридизированы с ними в организме, состоит в том, чтобы синтезировать олигонуклеотидные аналоги с модифицированными интернуклеозидными мостиками или звеньями [Uhlmann. E. Supra] Используемое здесь понятие "олигонуклеотидный аналог" относится к гомополимерным или гетерополимерным последовательностям нуклеозидов или их аналогов с иными, чем фосфодиэфирные, межнуклеозидными звеньями. Обычно рассматривают два типа олигонуклеотидных аналогов. Первый тип включает аналоги, имеющие модифицированные фосфатные звенья. Второй тип включает те аналоги, которые имеют нефосфатные межнуклеозидные звенья [Uhlmann E. Supra] Представителями нефосфатных межнуклеозидных звеньев являются силоксан, карбамат, карбоксиметильные эфиры, ацетамидат, карбонат и тиоэфиры. Наиболее близкое к настоящему изобретению отношение имеет силоксановые мостики или связи. Нуклеозидные димеры и гексамеры, имеющие силоксановые межнуклеозидные звенья, и метод синтеза таких полимеров описаны. (Ogilvie and Cormier, см. например, Ogilvie K.K. and Cornier, J.F. Tetrahedron Letters, 26(35):4159-4162 (1985); Cormier J.F. and Ogilvie K.K. Nucleic Acid Research, 16(10): 4583-4584 (1988)). В соотношении с этим опубликованным методом 5'-защищенный нуклеозид подвергают взаимодействию с силилирующим агентом, с образованием 3'-силилированного нуклеозида; этот силилированный нуклеозид затем подвергают взаимодействию с защищенным нуклеозидом до образования полностью защищенного 3', 5'-силилсвязанного динуклеозида. С полностью защищенного силилсвязанного динуклеозида с обоих концов снижают защиту, чтобы привести удлинение цепи еще через один цикл сочетания с защищенными нуклеозидами. При осуществлении этого метода возникают определенные проблемы. Когда этот метод используется для синтеза нуклеозидных полимеров, желаемый конечный продукт получается с низкими выходами, в пределах от 35 до 46% Низший выход обеспечен как образованием нежелательных побочных продуктов, в частности 3', 3'-симметрично димера [Uhlmann, E. Supra at pg. 553] что является результатом самоконьюгации нуклеозидных "строительных блоков", так и значительно потерей полевого продукта в процессе снятия защиты с полимера. Настоящее изобретение предусматривает способ соединения нуклеозидов силоксановым мостиком, препятствующий образованию 3',3'-димера. Этот метод заключает взаимодействие силилированного нуклеозида с незащищенным нуклеозидом в присутствии катализатора основного характера, создающего помехи. Применение незащищенных нуклеозидов, по сравнению с методом Ogilvie and Cormier, имеет преимущества, выражающиеся как в увеличении выхода желаемого конечного продукта, так и в эффективности синтеза /снижая, таким образом, стоимость/. Преимущественный вклад данного изобретения, согласно которому реакция протекает в присутствии катализатора основного характера, создающего стерические помехи, состоит в том, что обеспечивается то преимущество, что образование нежелательных 3',3'-симметричных димеров сжижено до минимума. Данное изобретение, обеспечивающее соединение нуклеозидов силоксановым мостиком, включает взаимодействие 3'-силилированного-5'-защищенного нуклеозида с незащищенным нуклеозидом в присутствии катализатора основного характера, создающего помехи. Силоксановый мостик имеет формулу:

а/ фиксация 5'-защищенного нуклеозида на твердом носителе;
б/ снятие защиты с иммобилизованного нуклеозида;
в/ взаимодействие незащищенного нуклеозида с 3'-силилированным - 5'-защищенным нуклеозидом в присутствии катализатора основного характера и нейтрального или основного апротонного растворителя;
г/ блокирование непрореагировавших нуклеозидов;
д/ повторные стадии б/, в/ и г/ до образования олигонуклеотидного аналога нужной длины;
е/ отделение образовавшегося олигонуклеотидного аналога от твердого носителя. Силоксановые межнуклеотидные звенья олигонуклеотидного аналога имеют формулу II.

где каждый R независимо друг от друга алкил C1 C6. В твердофазном методе катализатор основного характера, применяемый в соответствии в настоящем изобретением, является, преимущественно создающим помехи основанием, предпочтительно 2,6-ди-трет-бутил-4-метилпиридином. Обычно, основание, а именно имидазол, также присутствует в качестве стабилизатора силилированного промежуточного продукта. Его присутствие также помогает улучшить выход. Предпочтительный апротонный растворитель смесь ацетонитрила и диметилформамида, наиболее предпочтительно в объемном соотношении около 1:1. Образовавшийся олигонуклеотидный аналог предпочтительнее отделить от твердого носителя с помощью раствора водного аммиака в изопропаноле и ацетонитриле. Нуклеозиды, связанные силоксановым мостиком, синтезируются путем взаимодействия 3-силилированного-5'-защищенного нуклеозида с незащищенным нуклеозидом. Силоксановые мостики, рассматриваемые настоящим изобретением, являются диалкилсилильными звеньями с формулой:

где каждый R R независимо друг от друга алкил C1 C6. В предпочтительном варианте, R изопропильная или метильная группа. 3'-силилированный-5'-защищенный нуклеозид может быть приготовлен способом, известным и легко доступным специалисту в данной области. В предпочтительном варианте 3'-гидрокси-5'-защищенный нуклеозид подвергают взаимодействию с бифункциональным силилирующим реагентом в щелочном апротонном растворе. Защитную группу для гидроксильной группы у 5'-углеродного атома выбирают, исходя из ее кислотоустойчивости. Проходящие и легко доступные защитные группы известны для специалистов по синтезу олигонуклеотидов. Лучшими защитными группами являются тритильные, особенно монометокситритил и диметокситритил. Наиболее предпочтительной группой является диметокситритил /DМТ/. Бифункциональные силилирующие реагенты, рассматриваемые настоящим изобретением, имеют формулу:

где каждый R независимо друг от друга алкил C1-C6, а R1 удаляемая группа. В предпочтительном варианте силилирующий реагент является симметричным; R изопропил или метил, R1 Cl или SO2CF3. Щелочной апротонный раствор преимущественно содержит акцептор протонов, такой как основание, растворенное в апротонном растворителе. Подходящие основания и растворители известны и легко доступны специалистам. Предпочтительным основанием является создающее помехи основание типа 2,6-ди-трет-бутил-4-метилпиридин. Предпочтительный растворитель смесь диметилформамида /DMF/ и ацетонитрила /CH3CN/. Нуклеозиды, используемые в данном изобретении, включаются как в окси-, так и в дезоксинуклеотиды. Пуриновые и пиримидиновые части таких нуклеозидов при желании могут быть защищенными по экзоциклическим аминогруппам. Предпочтительной защитной группой для таких экзоциклических аминогрупп аденина и цитозина является бензоильная группа. Предпочтительной защитной группой для экзоциклической аминогруппы гуанина является изобутильная группа. При желании гуанин можно также защитить по O6 положению. 3'-Cилилированный нуклеозид, используемый в данном изобретении, может быть нуклеозидным мономером или 3'-концевым нуклеозидом олигонуклеотида или олигонуклеотидного аналога. 3',5'-Незащищенный нуклеозид, используемый в данном изобретении, может быть нуклеозидным мономером или 5'-концевым нуклеозидом олигонуклеотида или олигонуклетидного аналога, в котором как 3'-, так и 5'-концевые нуклеозиды не защищены. Олигонуклеотидный аналог может иметь любой тип межнуклеозидной связи. В равной мере способ данного изобретения может быть применен и для синтеза олигонуклеотидных аналогов, имеющих только силоксановые межнуклеотидные звенья. Синтез таких олигонуклеотидных аналогов осуществляют в соответствии с модифицированным методом синтеза в жидкой или твердой фазе [Gait, Supra]
В предпочтительном варианте метода синтеза в растворе за реакцией мономерного 3'-силилированного-5'-защищенного нуклеозида с первым мономерным незащищенным нуклеозидом следует реакция 5'-защищенного силилсвязанного /3' 5'/ динуклеозидного продукта /нуклеозидного диаметра/ с бифункциональным силилирующим реагентом и вторым незащищенным мономерным нуклеозидов, приводящая к образованию 5'-защищенного силилсвязанного тримера /тринуклеозида/. Длина цепи увеличивается путем повторения этих стадий реакции до тех пор, пока олигонуклеотидный аналог /нуклеозидный полимер/ не достигает желаемой длины. Допустимо и предпочтительно осуществлять удлинение цепи или проводить элонгацию путем выделения 5'-защищенных силилсвязанных полимеров после их образования, удаления 5'-защитной группы и использования таких незащищенных нуклеозидных полимеров вместо незащищенных мономерных нуклеозидов. В этом случае элонгация цепи протекает быстрее и более эффективно стехиометрически /т.е. тримердимер, тример + тример/. В предпочтительном варианте олигонуклеотидные аналоги, имеющие силоксановые межнуклеотидные звенья, синтезируются модифицированным твердофазным способом, использующим метод нуклеотидного связывания, предлагаемый данным изобретением. Начальная стадия твердофазного синтеза присоединение 5'-защищенного нуклеозида к твердому носителю, лучше к носителю на основе стекла с порами определенных размеров (СПС), нуклеозид лучше присоединять к ПС носителю через сукцинатную связь по 3'-положению гидроксила нуклеозида. Другие способы присоединения нуклеозидов к твердым носителям известны и вполне доступны специалистам в области синтеза олигонуклеотидов. Кроме того, такие 5'-защищенные нуклеозиды, связанные с ПС-носителем, коммерчески доступны. После присоединения первого нуклеозида к твердому носителю элонгация цепи проходит через последовательные стадии удаления 5'-гидроксилзащищающей группы у иммобилизованного нуклеозида, добавления 5'-защищенного-3'-силилированного нуклеозида вместе с активирующим реагентом и блокирование непрореагировавших цепей. Защищенная группа при 5'-положении гидроксила иммобилизованного нуклеозида удаляется кислотой, предпочтительно трихлоруксусной кислотой. Стадия активация протекает в присутствии добавленного силилированного нуклеозида и затрудненного основного активирующего реагента. Предпочтительный активирующий реагент создающее помехи основание, такое как 2,6-ди-трет-бутил-4-метилперидин. Предпочтительный растворитель это смесь ацетонитрила и диметилформамида. Непрореагировавшие цепи отщепляют или блокируют блокирующими реагентами, такими как уксусный ангидрид и N-метилимидазол. После того, как получена олигонуклеотидная цепь нужной длины, ее отделяют от твердого носителя и защитные группы удаляют традиционными методами [Gaits, Supra, at p-p 67-70]
Предпочтительно завершенные цепи отщеплять от твердого носителя раствором водного аммиака в изопропаноле и ацетонитриле. Используя описанные выше твердофазные синтетические методы, были получены 3',5'-силил-связанные нуклеозидные полимеры или олигонуклеотидные аналоги, имеющие силоксановые межнуклеозидные звенья любой желаемой длины. Специалисты в данной области могут учесть, что другие пути синтеза олигонуклеотидов могут быть модифицированы аналогичным образом, чтобы получить олигонуклеотидные аналоги, содержащие силоксановые межнуклеотидные звенья. Специалисты могут также учесть, что методы данного изобретения могут быть использованы в сочетании с известными приемами получения олигонуклеотидов или их аналогов, имеющих другие типы межнуклеозидных связей, чтобы получить олигонуклеотидные аналоги, содержащие одновременно силоксановые и любые другие связи. Подходящими основаниями являются аденин /A/, цитидин /C/, гуанин /G/, урацил /U/, тимин /T/ и их производные, например 5-бром- или 5-иодурацил, 5-метилцитозин, изоцитозин /2-амино-4-оксопиримидин/ изогуанин /2-оксо-6-аминопурин/, инозин /6-оксопурин/, 5-винилурацили 5-вилилцитозин. Следующие примеры иллюстрируют изобретение, но не ограничивают его. При описании ЯМР-спектров использовали следующие обозначения: S-синглет, d-дублет, t-триплет, g-квартет, m-мультиплет. Пример 1. Синтез 5'-O-диметокситритил-3'-O-/5 -диметилсилил-3'-O-ацетилтимидил/тимидина. Раствор 5'-O-диметокситритилтимидина /7,35 ммоль, 4,0 г/ в CH2Cl2 /40 мл/ и триэтиламино /16,16 ммоль, 2,2 мл/ медленно вводят в раствор дихлордиметилсилана /7,35 ммоль, 0,948 г, 0,89 мл/ в CH2Cl2 /10 мл/ при -40oC /сухой лед CH3CN/ и перемешивают при -40oC в течение 3 ч. Добавляют раствор 3'-O-ацетилтимидина /3,5 моль 1,0 г/ и триэтиламино /16,16 ммоль, 2,2 мл/ в CH2Cl2 /25 мл/ и реакционную смесь перемешивают при 0oC в течение 3 ч. Реакцию останавливают добавлением 5% водного раствора NaHCO /25 мл/. Органический слой промывают солевым раствором /2 х 25 мл/ и высушивают над Na2SO4. Сырой продукт /5,3 г/ очищают колоночной хроматографией /SiO2, градиент этилацетата/гексана/. Полученный выход: 670 мг, 22% Rf 0,23 /7:3 этилацетат:гексан/
1H-ЯМР /300 МГц, CDCl3/






Пример 3: Синтез N6-бензоил-2'-дезокси-5' -О-диметокситритил-3'-O-/5'- диизопропилсилилтимидил/аденозина. N6-бензоил-2'-дезокси-5'-O -диметокситритиладенозин /5 моль, 3,28 г/ и имидазол /10 ммоль, 0,68 г/ растворяют в ДМФА /15 мл/ и медленно добавляют раствор через капельную воронку в раствор дихлордиизопропилсилана /5 ммоль, 0,9 мл/ в ДМФА /1,5 мл/ при -40oC /сухой лед CH3CN/. Реакционную систему перемешивают при -40oC в течение 1 ч и добавляют растворы тимидина /7,5 ммоль, 1,81 г/ и имидазола /7,5 ммоль, 0,51 г/ в ДМФА /20 мл/ через капельную воронку. Реакционную смесь перемешивают при -40oC в течение 1 ч и затем доводят до комнатной температуры в течение ночи. Реакционную смесь затем вносят по каплям в тщательно перемешиваемую смесь льда с водой /1 л/ и перемешивают 30 мин. Осадок отфильтровывают и высушивают, получая белый осадок /5,8 г/, который очищают методом препаративной TXC /1 мм SiO2, 3% MeOH /EtOAc/. Полученный выход: 50 мг, 38. Rf 0,32 /2% MeOH /EtOAc/. 1H-NMR /300 МГц, CDCl3 /9,99/S, 1H, NH/; 8,76/S, 1H/; 8,22/S, 1H/; 8,09/d, J= 7,8, 2H/; 7,55 7,13/m, 13H/; 6,74/m, 4H/; 6,42/t, J=5,8 Гц, 1H/; 6,25/t, g= 6,0, 1H/; 4,96/d, J=5,4 Гц, 1H/; 4,48/S, 1H/; 4,19/d, J=3,8 Гц, 1H/; 3,94/S, 1H/; 3,83 3,72/m, 6H/; 3,38/d, J=3,4 Гц, 2H/; 2,83 - 2,76/m, 1H/; 2,60 6,52 /m, 1H/; 2,45 2,38/m, 1H/; 2,05 1,95/m, 1H/: 1,79/S, 3H/; 0,95/m, 14H/. FABMS /TG/G/:/M-H/=1011. Пример 4. Синтез N4-бензоил-2'-дезокси-5' -O-диметокситритил-3'-O- /5'-диизопропилсилилтимидил/цитидина. Процесс, описанный в примере 3, был использован для синтеза вышеназванного соединителя. Очистку целевого продукта осуществляют методом препаративной ТСХ /1 мм SiO2, 3% MeOH /EtOAc/ и получают чистый продукт. Определенный выход: 70% Rf 0,40 /2% MeOH /EtOAc/. 1H-NMR/CDCl3 /d 9,54/, 1H, NH/; 8,21/d, J=7,6 Гц, 1H/; 7,94/d, J=8,2 Гц, 2H/; 7,59 7,24/m, 14H/; 6,83/d; J=8,4 Гц, 4H/; 6,25 /m, 1H/, 4,58 /S, 1H/; 4,46/S, 1H/, 4,17/S, 1H/; 4,07-3,80/m, 3H/; 3,77/S, 6H/; 3,39/ABg, J=3,0 Гц, 10,9 Гц, DV = 29,1, 2Н/; 2,84-2,78/m, 1Н/; 2,46-2,41/m, 1H/; 2,14-1,79/m, 2Н/; 1,84/S, 3Н/; 0,98/m, 1Н/; FABMS /NBA/: /M-H/=987. Пример 5. Синтез 3'-силилированного- N4 -бензоил-2'-дезокси-5'-O-диметокситритилцитидина. Метод А. Раствор N4-бензоил-2'-5'-O -диметокситритилцитидина /0,4 ммоль, 260 мг/ и имидазола /0,8 ммоль, 52 мг/ в CH3CN /1,6 мл/ медленно добавляют шприцем в раствор дихлордиизопропилсилана /0,4 ммоль 72 мкл/ в CH3CN /0,4 мл/ при -40oC /сухой лед CH3CN/. Реакционную смесь перемешивают при -40oC в течение 30 мин, затем при комнатной температуре еще 30 мин. Реакционную смесь фильтруют и образовавшийся 3'-силилированный цитидин выделяют с помощью колоночной хроматографии /SiO2, градиент от 60% EtOAc/гексан до 100% EtOAc и 1% MeOH/EtOAc/. Выход: 100 мг, 28% Rf 0,71 /0,5% MeOH/EtOAc/. Было выделено также 50 мг 3'-3'-симметричного C-C димера. 1H-NMR /300 МГц, COCl3 /


Метод А. Раствор 5'-O-диметокситритилтимидина /14,7 ммоль, 8,0 г/ и имидазола /29,94 ммоль, 2,0 г/ в ДМФА /40 мл/ медленно добавляют через капельную воронку к раствору дихлордиизопропилсилана /14,7 ммоль 2,72 г, 2,64 мл/ в ДМФА /10 мл/ при -40oC сухой лед CH3CN/. Реакционную систему перемешивают при -40oC в течение 1 ч. Раствор тимидина /14,7 ммоль, 3,66 г/ и имидазола /9,4 ммоль, 2,0 г/ в ДМФА /40 мл/ добавляют через капельную воронку. Реакционную смесь перемешивают при -40oC в течение 1 ч, затем реакционную смесь добавляют с помощью канюли в токе N2 к раствору дихлордиизопропилсилана /14,7 ммоль, 2,72 г, 2,64 мл/ в ДМФА /10 мл/ при -40oC. Реакционную смесь перемешивают при -40oC в течение 1 ч. Добавляют раствор тимидина /14,7 ммоль, 3,56 г/ и имидазола /29,4 ммоль, 2,0 г/ в ДМФА /40 мл/ и реакционную смесь перемешивают при -40oC в течение 1 ч. Полученную смесь по каплям вносят в интенсивно перемешиваемую смесь лед/вода /2 л/ и перемешивают 30 мин. Осадок отфильтровывают и высушивают на воздухе. Белый осадок /27 г/ хроматографируют на колонке (150 г SiO2, градиент от 60 до 100% EtOAc/гексан) и получают чистый продукт. Полученный выход: 1,8 г, 10%
Метод Б. Раствор 5'-O-диметокситритил-3'-O-/5'-O -диизопропилоксилилтимидил/тимидина /1,11 ммоль, 1,0 г/ и 2,6-ди-трет-бутил-4-метилпиридина /0,28 ммоль, 60 мг/ в ДМФА /3 мл/ добавляют шприцем к раствору диизопропилсилилбистрифлата /1,22 ммоль, 0,504 г, 0,360 мл/ и 2,6-ди-трет-бутил-4-метилпиридина /1,22 ммоль, 0,25 г/ в CH3CN /3 мл/ при -40oC /сухой лед/ CH3CN/. Реакционную смесь перемешивают 1 ч при -40oC. Добавляют раствор имидазола /1,22 ммоль, 0,16 г/ в CH3CN /2,5 мл/ и реакционную систему доводят до комнатной температуры. Добавляют раствор тимидина /1,11 ммоль, 0,269 г/ в ДМФА /2 мл/ и реакционную смесь перемешивают 1 ч и добавляют по каплям к интенсивно перемешиваемой смеси лед-вода (1 л) и перемешивают дополнительно еще 30 мин. Осадок отфильтровывают и высушивают на воздухе и получают белый осадок, который растирают в порошок с гексаном /20 мл/, чтобы выделить чистый продукт. Полученный выход: 1,05 г 76% Rf 0,38 /5%/ MeOH/EtOAc/. 1H-NMR /300 МГц, CDCl3/ d 7,62/S, 1H/; 7,36-7,22/m, 11H/; 6,80/d, J=7,7, 4H/; 6,36-6,22/m, 3H/; 4,62-4,54/m, 2H/; 4,45/m, 1H/; 4,06-3,83/m, 7H/; 3,75/S, 6H/, 3,36 (AB, J=10,0 Гц, DV = 47,6 Гц 2Н/; 2,45-2,30/m, 3Н/; 2,28 -2,14/m, 1Н/; 2,13-2,00/m, 2Н/, 1,85/S, 3H/; 1,81/S, 3H/, 1,48/S, 3H/; 0,98/m, 28H. 13C-NMR /CDCl3/




Формула изобретения

где каждый R независимо друг от друга алкил С1 С6. 3. Способ по п.2, отличающийся тем, что R изопропил или метил. 4. Способ по п.1, отличающийся тем, что реакция взаимодействия включает силилирование 5'-защищенного нуклеозида бифункциональным силилирующим реагентом до образования силилированного нуклеозида, взаимодействие силилированного нуклеозида с незащищенным нуклеозидом в присутствии катализатора основного характера с последующим повторением первых двух стадий до образования олигонуклеотидного аналога. 5. Способ по пп.1 4, отличающийся тем, что силилированный нуклеозид и незащищенный нуклеозид являются мономерными нуклеозидами. 6. Способ по п.5, отличающийся тем, что мономерный нуклеозид выбирают из группы соединений, содержащей тимидин, N6 бензоилдезоксиаденозин, N4 бензоилдезоксицитидин и N2 изобутилдезоксигуанозин. 7. Способ по пп.1 6, отличающийся тем, что силилированный нуклеозид является 3'-концевым нуклеозидом олигонуклеотида или олигонуклеотидного аналога. 8. Способ по пп.1 7, отличающийся тем, что незащищенный нуклеозид является 5'-концевым нуклеозидом олигонуклеотида, или олигонуклеотидного аналога, в которых 3'- и 5'-концевые нуклеозиды не защищены. 9. Способ по пп.1 8, отличающийся тем, что реакцию взаимодействия осуществляют в апротонном растворе. 10. Способ по п.9, отличающийся тем, что реакцию взаимодействия осуществляют в нейтральном или щелочном апротонном растворе. 11. Способ по п. 9, отличающийся тем, что апротонный раствор содержит 2,6-ди-трет.бутил-4-метилпиридин в смеси ацетонитрила и диметилформамида. 12. Способ по пп. 1 11, отличающийся тем, что катализатором основного характера, создающим стерические помехи, является 2,6-ди-трет.бутил-4-метилпиридин. 13. Способ по п.4, отличающийся тем, что бифункциональный силилирующий реагент имеет формулу

где каждый R независимо друг от друга алкил С1 С6, а каждый R1 удаляемая группа. 14. Способ по п.13, отличающийся тем, что каждый R1 Cl или SO2SF3. 15. Способ по п.14, отличающийся тем, что каждый R независимо друг от друга изопропил или метил.
MM4A Досрочное прекращение действия патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе
Номер и год публикации бюллетеня: 16-2002
Извещение опубликовано: 10.06.2002