Способ электрооптического анализа клеток в суспензии и устройство для его осуществления
Использование: в области биотехнологии, микробиологии и медицине и более конкретно касается способа электрооптического анализа суспензии клеток и устройства для его реализации, используемых для определения морфометрических и электрофизических параметров клеток и связанных с ними физиологических характеристик клеток. Сущность изобретения заключается в определении величины анизотропии поляризуемости для отдельных фракций клеток, составляющих гетерогенную популяцию, используемую для оценки морфометрических и физиологических характеристик этих фракций. Для этого, в процессе наложения каждого формируемого с помощью микропроцессора 30 в генераторе 12 радиоимпульса электрического поля (ЭП) на исследуемую суспензию клеток, помещенную в электрооптическую ячейку 1, при одновременном пропускании через нее попеременно ортогональных световых потоков с помощью импульсных источников 2 и 3 света, изменяют при помощи коммутатора 15 электродов направление вектора ЭП относительно направления светового потока дискретно на 90o с частотой F, которую также изменяют в диапазоне от Fmin до Fmax таким образом, что Fi1 = Fi/2M, где i=(0,...,j-1), (j-1,...,0), M - положительное число, с одновременным изменением при помощи аттенюатора 13, соединенного с одновременным изменением при помощи аттенюатора 13, соединенного с парафазным усилителем 14 напряженности, Е в диапазоне от Emin до Emax так, что
в случае изменения напряженности электрического поля в сторону ее уменьшения, или
в случае изменения напряженности электрического поля в сторону ее увеличения, где i = (0,...,I), j = 1/M
log2(Fmax/Fmin). Величины Fmax, Fmin, Emax и Fmin определяют экспериментально в зависимости от вида исследуемой культуры клеток. Экспериментальный сигнал от исследуемой суспензии, определяемый как разность между интенсивностью световых потоков от источников 2 и 3 света, принимают фотоприемником 8, соединенным с преобразователем 9 напряжения в частоту, выходы которого соединены со входами счетчиков 10 и 11 частоты, регистрируют в микропроцессоре 30 и используют для расчета величины анизотропии поляризуемости клеток. 2 с.п. ф-лы, 9 з.а. ф-лы, 10 ил.
Изобретение относится к области биотехнологии, микробиологии и медицины и более конкретно касается способа электрооптического анализа суспензии клеток и устройства для его реализации, используемых для определения морфометрических и электрофизических параметров клеток и связанных с ними физиологических характеристик клеток.
В микробиологической, пищевой, медицинской и ряде других отраслей промышленности, использующих биотехнологические процессы, стоит задача определения физиологических и морфометрических показателей состояния клеток, отражающих качество и эффективность биотехнологического процесса. Традиционные микробиологические методы определения морфометрических параметров клеток путем микроскопирования и определения физиологических характеристик: жизнеспособности путем высева клеток на питательные среды и удельной скорости роста путем периодического подсчета клеток в счетной камере не отвечают современным требованиям из-за недостаточной оперативности. Известны способы оптического анализа параметров клеток, например на основе анализа изображений, полученных с помощью видеокамеры, (WO 89/03431). Анализ изображений позволяет определить морфологические признаки клеток, но не дает возможности определить физиологические характеристики клеток. Известен способ определения объема и концентрации клеток (Cell analysis, 1982, v.1, p.195-331), основанный на измерении временной зависимости изменения тока, текущего через калиброванное отверстие при прохождении через него исследуемой клетки. Существенная погрешность метода связана с интерпретацией сигнала от тесно следующих друг за другом двух или трех клеток как сигнала от одной клетки большего размера. Известен способ определения относительной концентрации жизнеспособных клеток, основанный на измерении величины флуоресценции клеток после их отработки флуоресцентной меткой (Микробиология, 1988, т.57, N 2, с.347-351), требующий обязательной калибровки и обладающий существенной погрешностью за счет неконтролируемого числа сайтов посадки флуоресцентной метки. Задачу быстрого определения физиологического состояния клеток и одновременно их морфологических параметров позволяет решить способ электрооптического анализа клеток, основанный на исследовании изменения светорассеяния при их ориентации в электрическом поле. В основе способа электрооптического анализа лежит эффект Керра. Суть эффекта состоит в изменении оптических свойств суспензии, в частности суспензии клеток, при воздействии на нее электрического поля. Воздействие электрического поля на суспензию вызывает появление на суспендированных клетках индуцированных зарядов. Их распределение и величина определяются действующим механизмом поляризуемости (Духин, Электрооптика коллоидов, Наукова думка, Киев, 1975). При объемном механизме поляризуемости индуцированные заряды появляются на границах раздела двух сред с различными комплексными диэлектрическими проницаемостями. Границами раздела структур клеток являются поверхности соприкосновения двойного электрического слоя и клеточной стенки, клеточной стенки и цитоплазматической мембраны, цитоплазматической мембраны и цитоплазмы. Величина индуцированных на границах разделов зарядов пропорциональна напряженности электрического поля зависит от соотношения диэлектрических проницаемостей структур. Интегральным параметром, описывающим процесс поляризуемости, является тензор а поляризуемости клетки. Тензор поляризуемости несферической клетки имеет по крайней мере две отличающиеся компоненты. Продольная компонента совпадает с длиной осью клетки, а поперечная ортогональная ей. Распределенные по объему клетки индуцированные заряды разных знаков образуют диполь. Диполь взаимодействует с электрическим полем и вызывает появление вращающего момента. Возникает преобладающее направление ориентации клеток, которое изменяет равновероятный характер распределения клеток по углам ориентации, описываемого функцией Больцмана. Угол ориентации клетки отсчитывается от направления падающего светового потока к направлению длинной оси клетки. При этом происходит изменение всех оптических характеристик суспензии: величины двулучепреломления, характер светорассеяния и величины оптической плотности суспензии вследствие изменения сечения G(t) рассеяния клеток. При напряженности Е электрического поля, соответствующего слабой ориентации клеток, зависимость изменения оптической плотности от квадрата напряженности имеет линейный характер. В зависимости от частоты электрического поля и электрических свойств клеток направление преобладающей ориентации клеток может совпадать с направлением вектора электрического поля или быть ортогональным ему. Ориентация клеток длинной осью вдоль светового потока будут приводить к увеличению сечения рассеяния и уменьшения интенсивности светового потока, а ориентация поперек светового потока к его уменьшению и соответственно к увеличению светового потока. Известен способ электрооптического анализа клеток в суспензии (SU, A, 469748), заключающийся в том, что через исследуемый образец суспензии пропускают световой поток с одновременным наложением на суспензию радиоимпульса электрического поля фиксированной частоты и напряженности, силовые линии которого направлены вдоль светового потока. Частоту электрического поля изменяют от импульса к импульсу. На каждой частоте измеряют оптическую плотность суспензии в отсутствии и присутствии электрического поля. По изменению оптической плотности определяют степень электроориентации клеток, по которой судят об их электрофизических характеристиках, например, о величине их анизотропии поляризуемости, связанной с комплексными диэлектрическими проницаемостями отдельных клеточных структур, а через них с физиологическими характеристиками клетки. Известно устройство для реализации этого способа (SU, A, 469748), содержащее электрооптическую ячейку с образцом исследуемой суспензии клеток, источник света, создающий световой поток, пропускаемый через ячейку, фотоприемное устройство, генератор гармонического напряжения и устройство управления работой этих элементов. Устройство содержит систему подачи и слива исследуемой суспензии. Использование этого способа для анализа суспензии неоднородных по размерам клеток позволяет определить только усредненную по размерам величину анизотропии поляризуемости клеток для всей популяции и не позволяет определить этот параметр для отдельных фракций клеток с разными размерами, составляющих данную популяцию. Кроме того, возникающее в исследуемой суспензии седиментация и флокуляция клеток, а также флуктуации плотности суспензии существенно снижают чувствительность и точность определения приращения оптической плотности, исходя из которой определяют величину анизотропии поляризуемости Эти возмущающие факторы особенно сильно проявляются при малом уровне сигнала, что характерно при ориентации клеток в высокочастотном диапазоне электрического поля. Появление данных факторов связано с тем, что измерения проводят в одном световом потоке и возникающие флуктуации плотности, седиментация и флокуляция не компенсируется. Также велики погрешности измерения, связанные с нестабильностью источника света и фотоприемника (фликкер шум). Эти погрешности частично устраняются при использовании двухлучевой схемы регистрации изменений оптической плотности суспензии с механическим переключением светового потока с опорного канала на измерительный (Биотехнология, 1989, N 2, с.214-215). Более высокой точности и чувствительности в определении электроориентации клеток позволяет достичь способ электрического анализа клеток в суспензии (SU, A, 913169), заключающийся в том, что световой поток пропускают через два исследуемых образца суспензии клеток с одновременным наложением радиоимпульса электрического поля фиксированной частоты и напряженности вектор которого для одного образца параллелен световому потоку, а для другого перпендикулярен (ортогонален) световому потоку. Частоту электрического поля, как и в предыдущем случае, также изменяют от импульса к импульсу. Измеряют интенсивность световых потоков, прошедших через исследуемую суспензию и характеризующих оптическую плотность суспензии одновременно в обоих образцах. По разности этих величин определяют величину анизотропии поляризуемости клеток, по которой судят об их электрофизических характеристиках. Для близких по размерам клеток величина изменения оптической плотности пропорциональна квадрату напряженности электрического поля до определенного порогового уровня. Этот уровень соответствует переходу от слабой степени ориентации клеток к сильной степени ориентации и является предпочтительным для достижения достаточной точности измерения. Поэтому, в начале проведения исследований экспериментальным путем определяют величину напряженности, при которой клетки переходят от слабой к сильной степени ориентации, и в дальнейшем все измерения проводят не изменяя напряженности электрического поля. Способ реализуется в устройстве (SU, A, 913169), содержащем две электрооптические ячейки с двумя плоскими электродами в каждой ячейке, которые заполняют исследуемой суспензией, источник света, создающий два световых потока, один из которых пропускают через одну ячейку, другой через вторую, и соответственно два фотоприемника с разностным усилителем для определения разности между интенсивностью световых потоков, а также генератор напряжения. Направление вектора электрического поля в одной ячейке параллельно световому потоку в этой ячейке, а направление вектора электрического поля в другой ячейке перпендикулярно световому потоку в этой ячейке. Этот способ также может быть использован только для анализа однородной суспензии клеток, поскольку он позволяет оценить лишь изменение суммарной оптической плотности суспензии и соответственно усредненную по размерам клеток величину анизотропии поляризуемости. Использование в устройстве двух ячеек и двух фотоприемников частично компенсирует погрешности, связанные с седиментацией и флокуляцией клеток, однако вносит дополнительные погрешности, связанные с неидентичностью исполнения ячеек и наличием нескомпенсированных низкочастотных шумов фотоприемников. Таким образом, ни один из известных способов электрооптического анализа клеток в суспензии не обеспечивает возможности достоверного определения анизотропии поляризуемости каждой из однородных по размерам фракций клеток, составляющих гетерогенную популяцию, т. е. не позволяет оценивать степень гетерогенности популяции по данному параметру. В основу изобретения положена задача разработать способ электрооптического анализа клеток в суспензии, позволяющей определять в гетерогенных смесях фракции с отличающимися морфометрическими и электрофизическими параметрами (т.е. оценивать степень гетерогенности популяции) путем использования разной степени инерционности клеток разных размеров при их ориентации в электрическом поле с изменяющимися параметрами и подбора этих параметров. Другая задача состоит в уменьшении низкочастотных (фликкер) шумов и компенсации возникающих флуктуаций плотности суспензии, флуктуации и седиментации клеток. В основу изобретения положена задача разработать устройство для осуществления способа электрооптического анализа клеток, позволяющее анализировать гетерогенную смесь клеток. Задача решается тем, что предлагается способ электрооптического анализа клеток в суспензии, при котором накладывают на исследуемую суспензию электрическое поле в виде импульсов, пропускают через нее световые потоки, измеряют интенсивность прошедших через суспензию световых потоков и определяют их разность как электрооптический сигнал для последующего определения частотной зависимости анизотропии поляризуемости клеток, в котором, согласно изобретению, при наложении каждого указанного импульса изменяют направление вектора электрического поля относительно направления светового потока дискретно на 90o с частотой F, при этом частоту F изменяют в диапазоне от Fmin до Fmax таким образом, что Fi+1 F1/2M, где i (0,j-1), или Fi-1 Fi/2M, где i (j-1,0), M положительное число. Для более эффективного определения фракций мелких клеток одновременно с изменением частоты F изменений направления вектора электрического поля дискретно на 90o изменяют напряженности Е электрического поля в диапазоне от Emin до Emax таким образом, что


а) на частоте заполнения радиоимпульса f1 1 кГц;
б) на частоте заполнения радиоимпульса f2 4,2 МГц. На фиг. 10 зависимость величины анизотропии поляризуемости от размера клеток Bac.subtilis на частоте f2 заполнения радиоимпульса нормированной на величину анизотропии поляризуемости, полученную на частоте f1. Известно, что процесс изменения сечения рассеяния G(t) клеток в течение воздействия электрического поля и связанного с ним изменения оптической плотности суспензии начинается с релаксационной и переходит в стационарную фазу. Для фракции клеток с размером b1 и весовым коэффициентом Ai он описывается соотношением:
dGi(t) Ai



где Ai Ni


Ni количество клеток i размера;
dQi приращение сечения рассеяния одиночной клетки i размера после завершения ее ориентации;
Di коэффициент вращательной диффузии для клеток с размером bi;
dai анизотропия поляризуемости клеток i фракции, равная разности продольной и поперечной компонент тензора а поляризуемости;
t длительность воздействия электрического поля неизменного направления, фиксированной напряженности и частоты. Стационарная фаза соответствует завершению процесса ориентации клеток при t


Через исследуемый образец суспензии поочередно пропускают два потока света, ортогональных друг другу, с частотой переключения не менее чем на два порядка больше чем частота F изменений направления вектора электрического поля. Количество изменений направления вектора электрического поля на 90o для каждого значения частоты F определяется достижением постоянной величины сигнала G(t) на стационарной фазе ориентации. На фиг.2 представлены результаты моделирования воздействия количества изменений направления вектора поля на 90




Точность определения электрооптического сигнала для каждой фракции заданного размера возрастает при изменении направления вектора электрооптического поля за счет симметричности сигнала и исключения погрешности выбора нулевой линии отсчета, обеспечиваемых тем, что измерения проводят на одном образце исследуемой суспензии при поочередном пропускании ортогональных друг другу потоков света. Выполнение измерений величины электрооптического сигнала в течение одного радиоимпульса позволяет определить совокупность значений коэффициентов An}i для данной частоты заполнения радиоимпульса fi. Проведение измерений на ряде частот позволяет определить наборы коэффициентовAn}i как функцию частоты f электрического поля. Нормировка величиныAn}i на величину оптической плотности суспензии и квадрат напряженности электрического поля позволяет найти величинуAn}i для каждой фракции клеток одного размера. Выполнение измерений на наборе частот электрического поля при подаче последовательности радиоимпульсов с разной частотой заполнения позволяет определить частотную дисперсию величиныAn}i для каждой фракции по размерам. Для определения физиологических характеристик клеток, например их внутреннего гомеостаза, синтеза клеточных структур и др. используют зависимости величины Ai или величины анизотропии поляризуемости от частоты f электрического поля, полученные для каждой фракции клеток определенного размера. Гетерогенность суспензии по указанным физиологическим параметрам определяют путем расщепления электрооптического сигнала, полученного для каждой фракции с определенным размером клеток, на сумму сигналов, соответствующих фракциям клеток с различными поляризационными параметрами. Такие зависимости для фракций жизнеспособных клеток, поврежденных клеток, клеток на стадии споруляции или клеток, подверженных различным видам воздействий, получают в процессе предварительных измерений. Устройство для электрооптического анализа клеток в суспензии (фиг.3) содержит электрооптическую ячейку 1 для исследуемой суспензии, сообщенную с емкостями для приготовления исследуемого образца и сбора отходов, не показанными на схеме, импульсные источники 2 и 3 света и зеркала 4-7, служащие для сведения световых потоков от источников 2 и 3 к фотоприемнику 8 (т.е. для обеспечения оптической связи источников 2 и 3 света с фотоприемником 8), соединенному в электрическую цепь с преобразователем 9 напряжения в частоту, выход которого соединен со входами стробируемых счетчиков 10 и 11 частоты. Устройство также содержит генератор 12 гармонического напряжения, аттенюатор 13, вход которого соединен с выходом генератора 12, парафазный усилитель 14, вход которого соединен с выходом аттенюатора 13, и коммутатор 15 электродов, входы которого соединены с выходами парафазного усилителя 14. Электрооптическая ячейка 1 выполнена (фиг.4) в виде параллелепипеда с квадратным основанием, содержит четыре светопрозрачные стенки 16 и электроды 17-20, для случая четырехэлектpодной ячейки, или электроды 21-29, для случая девятиэлектродной ячейки (фиг.5). Электроды 17-20 и 21-29 выполнены в виде стрежней и служат для создания электрического поля в ячейке 1. Электроды 17-20 установлены вертикально по углам ячейки 1 на одинаковом расстоянии от ее вертикальной оси. Электроды 21-29 установлены в ячейке 1 вертикально тремя рядами по три электрода в каждом так, что расстояние между соседними электродами в ряду равно расстоянию между электродами, причем средний электрод 29 среднего ряда установлен по вертикальной оси ячейки 1 и является центральным. При этом электроды 17 и 18 соединены с выходами коммутатора 15 электродов, а электроды 19 и 20 соединены с выходами парафазного усилителя 14. Электроды 21 и 22 соединены с одним выходом коммутатора 15 электродов, а электроды 23 и 24 соединены с другим выходом коммутатора 15 электродов, электроды 25-28 соединены с одним выходом парафазного усилителя 14, а электрод 29 соединен с другим выходом парафазного усилителя 14. Устройство снабжено микропроцессором 30 с общей шиной 31, с которой связаны управляющие входы генератора 12, аттенюатора 13, коммутатора 15 электродов и импульсных источников 2 и 3 света и выходы стробируемых счетчиков 10 и 11 частоты. Устройство работает следующим образом. В электрооптическую ячейку 1 помещают исследуемый образец суспензии. На управляющие входы импульсных источников 2 и 3 света по общей шине 31 микропроцессора 30 подают кодовые последовательности, задающие интенсивность светового потока каждого из импульсных источников 2 и 3 света. По управляющим сигналам микропроцессора 30, следующим с частотой переключения световых потоков, импульсные источники 2 и 3 света поочередно создают световые потоки, которые проходят в перпендикулярные направлениях через электрооптическую ячейку 1 Одновременно в ячейке 1 создают электрическое поле с изменяемыми параметрами. По управляющему сигналу от микропроцессора 30 генератор 12 формирует гармоническое напряжение заданной частоты в диапазоне от 103 до 108 Гц в виде радиоимпульсов с фиксированной частотой заполнения. Напряжение поступает на управляющий аттенюатор 13, в котором коэффициент ослабления под управлением микропроцессора 30 меняется с переходом к следующей частоте изменения направления вектора электрического поля и таким образом изменяет напряженность поля в ячейке 1. Далее напряжение поступает на парафазный усилитель 14, формирующий два напряжения со смещением фазы в 180o. Два парафазных напряжения парафазного усилителя 14 одновременно подаются на электроды 17 и 18 или 25-28 и 29 непосредственно, а на электроды 19, 20 или 21 и 22, 23 и 24 через коммутатор 15 электродов. По управляющим сигналам от микропроцессора 30 коммутатор 15 обеспечивает поочередно подключение к электродам парафазных напряжений с частотой F изменения направления вектора электрического поля, что приводит к изменению направления вектора поля в электрической ячейке 1 на 90o. Электрическое поле в ячейке 1 вызывает ориентацию частиц, которая приводит к увеличению оптической плотности суспензии в одном направлении и уменьшению оптической плотности в перпендикулярном направлении, что соответствует изменению интенсивности ортогональных световых потоков, создаваемых поочередно источниками 2 и 3 света, определяемому как электрооптический сигнал. Изменение направления вектора электрического поля приводит к изменению ориентации клеток и смене характера изменения оптической плотности в этих направлениях на противоположный. Системой зеркал 4-7 световые потоки сводятся на фотоприемник 8. Выходное напряжение фотоприемника 8 поступает на преобразователь 9 напряжения в частоту. Импульсы с выхода преобразователя 9 накапливаются в стробируемых счетчиках 10 и 11 частоты. Количество импульсов соответствует интенсивности ортогональных световых потоков прошедших через ячейку 1. Содержание счетчиков 10 и 11 считывается в микропроцессор 30 и после определения их разности используется для расчета селективных величин анизотропии поляризуемости клеток различных фракций и их морфометрических параметров. Конечным регистрируемым в микропроцессоре 30 сигналом является изменение во времени оптических свойств суспензии клеток, определяемое как разность интенсивностей ортогональных световых потоков, возникшая в процессе воздействия на суспензию радиоимпульса электрического поля с фиксированной частотой f заполнения и изменяющимися параметрами поля F и Е. Программирование изменяющихся параметров электрического поля на протяжении каждого радиоимпульса обеспечивает возможность определения фракционного состава клеток в суспензии. Кроме того, изменение направления вектора электрического поля на протяжении радиоимпульса позволяет повысить точность измерений электрооптического сигнала за счет исключения влияния дрейфа нулевой линии. Определение разности интенсивности ортогональных световых потоков, прошедших через один и тот же образец суспензии элементарный объем, позволяет исключить одинаковое действие в суспензии седиментации частиц и шумы флуктуаций плотности. Преимущества предлагаемого способа и устройства для его осуществления иллюстрируются конкретными примерами осуществления способа:
Пример 1. Определение гетерогенности суспензии клеток E.coli. Культуральную жидкость с клетками E.coli С 600, полученную после культивирования на качалке в течение 5 ч при 37oC на минеральной среде М9 (Методы общей бактериологии/ под ред. Ф.Герхарда, т.1, М. Мир, 1984, гл.3) с добавкой 0,4% глюкозы и прогретую в водяной бане при 60oC в течение 10 мин, отфильтровали через целлюлозную мембрану "Владипор N 5", осадок из клеток на фильтре промыли дистиллированной водой и ресуспендировали в ТРИС-фосфатный буфер с удельной электропроводностью 10-2 Ом-1м-1. Полученную суспензию с оптической плотностью 0,4 ед. поместили в электрооптическую ячейку 1 описанного выше устройства. Выполнили предварительные и основные измерения. Предварительные измерения провели для определения исходных параметров Fmax, Fmin, Emax, Emin и j для данной культуры. Для этого с микропроцессора 30 через общую шину 31 подачи сигнал на управляющие входы генератора 12 и получили с его выхода гармоническое напряжение с частотой f 1,024 МГц. Через цепь, состоящую из управляемого аттенюатора 13, парафазного усилителя 14 и коммутатора электродов 15 подали гармоническое напряжение на электроды 21-29 ячейки 1. С помощью микропроцессора 30 через общую шину 31 в каждый момент времени определяли разность содержимого счетчиков 10 и 11 и вывели ее на дисплей (необозначенный на чертежах) как функцию времени. Создали напряженность поля в ячейке Е 10000 В/м путем изменения величины затухания аттенюатора 13 при подаче на его управляющий вход сигнала с микропроцессора 30 через общую шину 31. Величину частоты f и величину напряженности Е выбирали из условия получения наибольшей величины электрооптического сигнала. Изменяя частоту F изменения направления вектора электрического поля от величины F=4 Гц до величины F 0,031 Гц обнаружили после определения микропроцессором 30 электрооптического сигнала, как разности содержимого счетчиков 10 и 11, появление электрооптического сигнала со стационарным участком на частоте F 0,5 Гц и выбрали эту частоту в качестве Fmax. Определили, что исчезновение изменений стационарной величины электрооптического сигнала происходит на частоте 0,062 Гц, и выбрали эту частоту в качестве Fmin. Направление вектора на 90o меняли на каждой частоте F пять раз, столько же раз на каждой частоте F проводили измерения электрооптического сигнала. М выбрали равным 1 и рассчитали, что j=1/M






Пример 2. Определение электрофизической гетерогенности клеток Bac. subtilis. Культуральную жидкость с клетками Bac. subtilis, находящимися на стадии споруляции, полученную после культивирования на качалке при 30oC в течение 24 ч на среде (Бельтюкова К.И. и др. Методы исследования возбудителей бактериальных болезней растений, Киев. Наукова думка, 1968), содержащий (в г/л) ферментативный гидролизат дрожжей (20), глюкозу (10), MgSO4






Формула изобретения
Fi

где i(0,i-1), (j-1,0),

М положительное число;
Fmax определяют по частоте изменения направления вектора напряженности электрического поля, при которой появляется электрооптический сигнал, а Fmin определяют по частоте изменения направления вектора напряженности электрического поля, при которой исчезает изменение стационарной величины электрооптического сигнала. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что одновременно с изменением частоты F изменения направления вектора напряженности электрического поля изменяют напряженность Е электрического поля в диапазоне от Emin до Emax по формуле

в случае изменения напряженности электрического поля в сторону ее увеличения, или по формуле

в случае изменения напряженности электрического поля в сторону ее уменьшения,
где i=(0,i),

при этом Emin величина напряженности электрического поля, определяющая пороговый уровень слабой степени ориентации крупных клеток;
Emax величина напряженности, определяющая пороговый уровень слабой степени ориентации мелких клеток. 3. Способ по пп.1 и 2, отличающийся тем, что указанные величины Fmax, Fmin, Emax и Emin определяют экспериментально в зависимости от вида исследуемой культуры клеток. 4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что изменяют направление вектора напряженности электрического поля на 90o при любой частоте F изменения вектора напряженности электрического поля по меньшей мере три раза. 5. Способ по п.1, отличающийся тем, что исследуемую суспензию берут в виде элементарного объема, через который поочередно пропускают два световых потока, ортогональных друг другу. 6. Способ по п.1, отличающийся тем, что на исследуемую суспензию накладывают электрическое поле, вектор напряженности которого в начальный момент времени параллелен или ортогонален по меньшей мере одному указанному световому потоку. 7. Устройство для электрооптического анализа клеток в суспензии, содержащее электрооптическую ячейку, снабженную светопрозрачными окнами, расположенными друг напротив друга, и электродами, источник света, оптически связанный с фотоприемником, соединенным с блоком определения разности интенсивностей световых потоков, и генератор импульсов электрического напряжения, соединенный с электродами, отличающееся тем, что электрооптическая ячейка содержит четыре светопрозрачных окна и по меньшей мере четыре электрода в виде стержней, установленных между указанными окнами, при этом устройство снабжено дополнительным источником света, оптически связанным с фотоприемником, причем оба источника выполнены импульсными, а также устройство снабжено последовательно соединенными аттенюатором электрического напряжения с возможностью управления величиной электрического напряжения, парафазным усилителем и коммутатором электродов, подключенными к генератору электрического напряжения, при этом вход парафазного усилителя соединен с выходом аттенюатора, его выходы с двумя диагонально расположенными электродами и входами коммутатора электродов, выходы которого соединены с двумя другими диагонально расположенными электродами. 8. Устройство по п.7, отличающееся тем, что электрооптическая ячейка содержит девять электродов, установленных тремя рядами по три электрода в каждом ряду и расстояние между соседними электродами в ряду равно расстоянию между рядами, а средний электрод среднего ряда является центральным, при этом крайние электроды первого и третьего рядов соединены с одним выходом парафазного усилителя, центральный электрод соединен с другим выходом парафазного усилителя, а остальные попарно противолежащие электроды соединены с коммутатором электродов. 9. Устройство по п.7, отличающееся тем, что оно снабжено двумя стробируемыми счетчиками частоты, блок определения разности интенсивностей световых потоков выполнен в виде преобразователя напряжения в частоту, выход которого соединен с входами двух стробируемых счетчиков частоты. 10. Устройство по п.7, отличающееся тем, что электрооптическая ячейка выполнена в виде параллелепипеда с квадратным основанием. 11. Устройство по п.7, отличающееся тем, что указанная оптическая связь источников света и фотоприемником выполнена в виде четырех зеркал, одно из которых установлено на оси светового потока, создаваемого одним источником света, а другое на оси светового потока, создаваемого другим источником света, а два других расположены между предыдущими зеркалами и установлены относительно друг друга под углом, обеспечивающим падение указанных световых потоков на фотоприемник под углом 90o.
РИСУНКИ
Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5, Рисунок 6, Рисунок 7, Рисунок 8, Рисунок 9, Рисунок 10